| 致谢 | 第6-8页 |
| 摘要 | 第8-10页 |
| Abstract | 第10-12页 |
| 缩略词表 | 第13-19页 |
| 1 引言 | 第19-43页 |
| 1.1 植物对逆境胁迫的响应机制 | 第19-27页 |
| 1.1.1 植物对逆境胁迫的感知与响应 | 第19-20页 |
| 1.1.2 植物应答低温胁迫的机制 | 第20-23页 |
| 1.1.3 植物应答光抑制的机制 | 第23-27页 |
| 1.2 光、温信号对植物抗逆性的调控作用 | 第27-30页 |
| 1.2.1 光质对植物抗逆性的调控作用 | 第28-29页 |
| 1.2.2 光周期对植物抗逆性的调控作用 | 第29-30页 |
| 1.2.3 冷驯化在低温胁迫中对植物的调控作用 | 第30页 |
| 1.3 光的信号转导及其在植物抗逆响应中的调控作用 | 第30-38页 |
| 1.3.1 光敏色素介导的光信号转导对植物抗逆性的调控作用 | 第31-32页 |
| 1.3.2 光敏色素互作因子(PIFs)对植物抗逆性的调控作用 | 第32-34页 |
| 1.3.3 转录因子HY5在植物生长发育及逆境抗性中的调控作用 | 第34-38页 |
| 1.4 ROS信号、MAPKs级联及激素对植物抗逆性的调控作用 | 第38-41页 |
| 1.4.1 ROS信号对植物抗逆性的调控作用 | 第38-39页 |
| 1.4.2 MAPKs级联对植物抗逆性的调控作用 | 第39-40页 |
| 1.4.3 激素在植物抗逆调控中的作用 | 第40-41页 |
| 1.5 本文的研究目的和意义 | 第41-43页 |
| 2 光敏色素A与B通过依赖于ABA的JA信号拮抗性地调控番茄低温抗性 | 第43-62页 |
| 2.1 材料与方法 | 第45-48页 |
| 2.1.1 实验材料和病毒诱导的基因沉默(VIGS) | 第45-46页 |
| 2.1.2 低温及光处理 | 第46页 |
| 2.1.3 ABA与JA处理 | 第46-47页 |
| 2.1.4 低温抗性实验 | 第47页 |
| 2.1.5 测量内源植物激素ABA和JA的含量 | 第47-48页 |
| 2.1.6 RNA提取及实时荧光定量PCR(qRT-PCR)分析 | 第48页 |
| 2.1.7 数据分析 | 第48页 |
| 2.2 结果与分析 | 第48-57页 |
| 2.2.1 CBFs介导红光(R)和远红光(FR)调控的低温抗性 | 第48-51页 |
| 2.2.2 光敏色素在R和FR调控的低温抗性中起着重要的作用 | 第51-55页 |
| 2.2.3 光信号和冷刺激的结合对于提高番茄低温抗性至关重要 | 第55页 |
| 2.2.4 激素ABA及JA在R和FR调控的低温抗性中起关键性作用 | 第55-57页 |
| 2.2.5 在L-R//FR条件下,ABA是诱导JA信号应答低温胁迫的必需因子 | 第57页 |
| 2.3 讨论 | 第57-62页 |
| 3 光信号对低温下番茄光抑制及光保护的调控作用 | 第62-84页 |
| 3.1 材料与方法 | 第64-68页 |
| 3.1.1 植物材料及生长条件 | 第64-65页 |
| 3.1.2 低温及光处理 | 第65页 |
| 3.1.3 ABA与DMTU处理 | 第65-66页 |
| 3.1.4 抗性指标及叶绿素荧光的测定 | 第66页 |
| 3.1.5 抗氧化物酶活性的测定 | 第66-67页 |
| 3.1.6 气孔开度及H202亚细胞定位 | 第67页 |
| 3.1.7 RNA提取及实时荧光定量PCR(qRT-PCR)分析 | 第67页 |
| 3.1.8 RNA转录组测序分析(RNA-seq) | 第67页 |
| 3.1.9 重组蛋白的诱导及凝胶电泳迁移实验(EMSA) | 第67-68页 |
| 3.1.10 染色质免疫沉淀(ChIP)实验 | 第68页 |
| 3.2 结果与分析 | 第68-79页 |
| 3.2.1 植物冠层中光抑制的空间变化部分归因于光质条件的变化 | 第68-70页 |
| 3.2.2 PhyA是光质调控光抑制过程中的正调控因子 | 第70-71页 |
| 3.2.3 由FR诱导的HY5加强植物的光保护作用进而缓解低温造成的光抑制 | 第71-73页 |
| 3.2.4 HY5转录激活ABI5 | 第73-76页 |
| 3.2.5 ABI5在光质调控光抑制及光保护中的作用 | 第76页 |
| 3.2.6 依赖于RBOH1的ROS信号激活光保护途径缓解低温造成的光抑制 | 第76-78页 |
| 3.2.7 光活化的CEF在减缓植物光抑制中起重要作用 | 第78-79页 |
| 3.3 讨论 | 第79-84页 |
| 4 HY5在光信号及冷驯化调控番茄低温抗性中的作用 | 第84-99页 |
| 4.1 材料与方法 | 第86-88页 |
| 4.1.1 植物材料及生长条件 | 第86页 |
| 4.1.2 低温及光处理 | 第86页 |
| 4.1.3 抗性指标及激素测定 | 第86-87页 |
| 4.1.4 RNA提取及实时荧光定量PCR(qRT-PCR)分析 | 第87页 |
| 4.1.5 蛋白的提取及免疫印迹分析 | 第87页 |
| 4.1.6 重组蛋白的诱导及凝胶电泳迁移实验(EMSA) | 第87页 |
| 4.1.7 染色质免疫沉淀(ChIP)实验及ChIP-qPCR分析 | 第87-88页 |
| 4.2 结果与分析 | 第88-95页 |
| 4.2.1 光敏色素在季节变化和番茄耐寒性中的作用 | 第88-89页 |
| 4.2.2 HY5调控季节变化中番茄的低温抗性 | 第89-92页 |
| 4.2.3 HY5转录激活NCED6 | 第92-94页 |
| 4.2.4 NCED6是季节变化中提高番茄低温抗性的重要因子 | 第94-95页 |
| 4.3 讨论 | 第95-99页 |
| 5 PIF4与MPK3互作参与光质对番茄低温抗性的调控 | 第99-116页 |
| 5.1 材料与方法 | 第101-103页 |
| 5.1.1 植物材料及生长条件 | 第101页 |
| 5.1.2 低温及光处理 | 第101页 |
| 5.1.3 GA_3与PAC处理 | 第101-102页 |
| 5.1.4 低温抗性实验 | 第102页 |
| 5.1.5 蛋白的提取及免疫印迹分析 | 第102页 |
| 5.1.6 酵母双杂及双分子荧光互补(BiFC)实验 | 第102-103页 |
| 5.1.7 番茄中GAIs及PIFs基因的系统发育分析 | 第103页 |
| 5.1.8 RNA提取及实时荧光定量PCR(qRT-PCR)分析 | 第103页 |
| 5.2 结果与分析 | 第103-113页 |
| 5.2.1 PIF4参与了光质对番茄低温抗性的调控过程 | 第103-106页 |
| 5.2.2 MPK3与PIF4互作 | 第106-107页 |
| 5.2.3 MPK3参与了光质对番茄低温抗性的调控过程 | 第107-108页 |
| 5.2.4 GA负调控番茄的低温抗性 | 第108-110页 |
| 5.2.5 GAI4在光质调控番茄低温抗性中起关键作用 | 第110-113页 |
| 5.3 讨论 | 第113-116页 |
| 6 总结 | 第116-119页 |
| 参考文献 | 第119-146页 |
| 附图 | 第146-161页 |
| 附表 | 第161-182页 |
| 作者简历 | 第182页 |
