| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-9页 |
| 第1章 绪论 | 第16-40页 |
| 1.1 研究背景和意义 | 第16页 |
| 1.2 疏水性有机物污染环境概述 | 第16-23页 |
| 1.2.1 疏水性有机污染物 | 第16-17页 |
| 1.2.2 石油烃类有机污染物 | 第17-19页 |
| 1.2.3 常用修复技术 | 第19-23页 |
| 1.3 表面活性剂概述 | 第23-27页 |
| 1.3.1 生物表面活性剂 | 第23-24页 |
| 1.3.2 鼠李糖脂 | 第24-27页 |
| 1.4 鼠李糖脂在生物降解作用机制的初步探讨 | 第27-37页 |
| 1.4.1 促进疏水性有机污染物的水相分配 | 第28-30页 |
| 1.4.2 影响微生物细胞和HOCs的亲和度 | 第30-35页 |
| 1.4.3 透化作用 | 第35-36页 |
| 1.4.4 鼠李糖脂的生物降解 | 第36-37页 |
| 1.5 研究目的和内容 | 第37-40页 |
| 1.5.1 研究目的 | 第37-38页 |
| 1.5.2 研究内容 | 第38-40页 |
| 第2章 鼠李糖脂的纯化及低浓度下的增溶行为 | 第40-53页 |
| 2.1 前言 | 第40页 |
| 2.2 材料与方法 | 第40-46页 |
| 2.2.1 实验材料 | 第40-41页 |
| 2.2.2 实验仪器与设备 | 第41页 |
| 2.2.3 鼠李糖脂的纯化与鉴定 | 第41-43页 |
| 2.2.4 高效液相色谱-质谱分析 | 第43页 |
| 2.2.5 临界胶束浓度的测定 | 第43页 |
| 2.2.6 鼠李糖脂增溶正十六烷 | 第43-45页 |
| 2.2.7 聚集体的冷冻透射电镜观察 | 第45-46页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第46-51页 |
| 2.3.1 鼠李糖脂的纯化与鉴定 | 第46页 |
| 2.3.2 HPLC-MS鉴定 | 第46-49页 |
| 2.3.3 单糖脂的临界胶束浓度 | 第49页 |
| 2.3.4 稳定性测试 | 第49-50页 |
| 2.3.5 聚集体的冷冻透射电镜观察 | 第50-51页 |
| 2.4 本章小结 | 第51-53页 |
| 第3章 鼠李糖脂调控菌体表面疏水性对正十六烷生物降解的影响 | 第53-69页 |
| 3.1 前言 | 第53-54页 |
| 3.2 材料与方法 | 第54-61页 |
| 3.2.1 实验材料 | 第54页 |
| 3.2.2 实验仪器与设备 | 第54-55页 |
| 3.2.3 微生物培养 | 第55-56页 |
| 3.2.4 菌体的鼠李糖脂处理 | 第56页 |
| 3.2.5 增溶态溶液制备 | 第56-57页 |
| 3.2.6 正十六烷蒸发测试 | 第57页 |
| 3.2.7 生物降解实验 | 第57-58页 |
| 3.2.8 样品测定与分析 | 第58-61页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第61-68页 |
| 3.3.1 正十六烷蒸发测试 | 第61-62页 |
| 3.3.2 P.aeruginosa菌体CSH的变化 | 第62页 |
| 3.3.3 葡萄糖生物降解分析 | 第62-64页 |
| 3.3.4 正十六烷生物降解分析 | 第64-66页 |
| 3.3.5 增溶态正十六烷生物降解分析 | 第66-68页 |
| 3.4 本章小结 | 第68-69页 |
| 第4章 表面活性剂的增溶作用对正十六烷生物降解的影响 | 第69-84页 |
| 4.1 前言 | 第69-70页 |
| 4.2 材料与方法 | 第70-75页 |
| 4.2.1 实验材料 | 第70页 |
| 4.2.2 实验仪器与设备 | 第70-71页 |
| 4.2.3 微生物培养 | 第71页 |
| 4.2.4 培养基的制备 | 第71-72页 |
| 4.2.5 生物降解实验 | 第72页 |
| 4.2.6 样品测定与分析 | 第72-75页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第75-83页 |
| 4.3.1 正十六烷的水相分配 | 第75页 |
| 4.3.2 鼠李糖脂的增溶作用 | 第75-78页 |
| 4.3.3 Trinton X-100的增溶作用 | 第78-80页 |
| 4.3.4 SDBS的增溶作用 | 第80-83页 |
| 4.4 本章小结 | 第83-84页 |
| 第5章 鼠李糖脂增溶对正十六烷生物可利用性的影响 | 第84-100页 |
| 5.1 前言 | 第84-85页 |
| 5.2 材料与方法 | 第85-89页 |
| 5.2.1 实验材料 | 第85页 |
| 5.2.2 实验仪器与设备 | 第85页 |
| 5.2.3 微生物菌种 | 第85-86页 |
| 5.2.4 培养基的设置与制备 | 第86-87页 |
| 5.2.5 生物降解实验 | 第87页 |
| 5.2.6 样品分析 | 第87-89页 |
| 5.2.7 透射电镜观察 | 第89页 |
| 5.3 结果与讨论 | 第89-98页 |
| 5.3.1 鼠李糖脂对正十六烷的增溶作用 | 第89页 |
| 5.3.2 鼠李糖脂的生物可降解性 | 第89-90页 |
| 5.3.3 完全增溶态正十六烷的生物降解 | 第90-93页 |
| 5.3.4 多相形态正十六烷的生物降解 | 第93-96页 |
| 5.3.5 增溶与生物可利用性之间的关联 | 第96-97页 |
| 5.3.6 透射电镜观察 | 第97-98页 |
| 5.4 本章小结 | 第98-100页 |
| 结论与展望 | 第100-103页 |
| 参考文献 | 第103-121页 |
| 附录 A 攻读学位期间所发表的学术论文 | 第121-126页 |
| 附录 B 攻读学位期间获得的发明专利 | 第126-128页 |
| 附录 C 攻读学位期间参与和负责的研究课题 | 第128-129页 |
| 附录 D 攻读学位期间获得的奖励 | 第129-130页 |
| 致谢 | 第130页 |
