| 中文摘要 | 第4-6页 |
| abstract | 第6-8页 |
| 第1章 引言 | 第13-15页 |
| 第2章 材料与方法 | 第15-30页 |
| 2.1 实验试剂 | 第15-24页 |
| 2.1.1 细胞培养相关试剂 | 第15页 |
| 2.1.2 筛选药物 | 第15-24页 |
| 2.1.3 RT-PCR相关试剂 | 第24页 |
| 2.1.4 Western-blot的相关试剂 | 第24页 |
| 2.2 实验器材 | 第24-25页 |
| 2.3 实验方法 | 第25-29页 |
| 2.3.1 细胞培养 | 第25-26页 |
| 2.3.2 细胞冻存 | 第26页 |
| 2.3.3 细胞复苏 | 第26页 |
| 2.3.4 骨关节炎体外模型建立 | 第26页 |
| 2.3.5 细胞形态学检测 | 第26页 |
| 2.3.6 MTT确定候选药物的药效 | 第26-27页 |
| 2.3.7 蛋白免疫印迹 | 第27-28页 |
| 2.3.8 RT-PCR检测mRNA的表达水平 | 第28-29页 |
| 2.4 统计分析 | 第29-30页 |
| 第3章 结果 | 第30-38页 |
| 3.1 药物的筛选 | 第30-32页 |
| 3.1.1 药物对细胞毒性筛选 | 第30-31页 |
| 3.1.2 药物对模型组细胞活性的调节 | 第31-32页 |
| 3.2 选取HYBID作为OA靶蛋白 | 第32-34页 |
| 3.3 药物对HYBID表达的影响 | 第34-35页 |
| 3.4 信号通路的相关研究 | 第35-38页 |
| 3.4.1 抑制ERK活性在显著降低HYBID水平 | 第35-36页 |
| 3.4.2 JAK/ERK/p90可能作为HYBID表达最主要的信号通路 | 第36-38页 |
| 第4章 讨论 | 第38-43页 |
| 第5章 结论 | 第43-44页 |
| 参考文献 | 第44-53页 |
| 作者简介及在学期间所取得的科研成果 | 第53-54页 |
| 致谢 | 第54-55页 |