| 缩略语表 | 第5-7页 |
| 中文摘要 | 第7-10页 |
| 英文摘要 | 第10-13页 |
| 前言 | 第14-16页 |
| 文献回顾 | 第16-27页 |
| 1 实验材料、试剂和仪器 | 第27-28页 |
| 1.1 实验动物 | 第27页 |
| 1.2 主要试剂 | 第27-28页 |
| 1.3 仪器设备 | 第28页 |
| 2 实验方法 | 第28-34页 |
| 2.1 获取GFP转基因小鼠BMCs | 第28-29页 |
| 2.2 骨髓移植构建小鼠嵌合体模型 | 第29页 |
| 2.3 小鼠嵌合度分析 | 第29页 |
| 2.4 激光诱导小鼠CNV模型 | 第29页 |
| 2.5 组织ELISA检测MMP-2/MMP-13的表达 | 第29-30页 |
| 2.6 Western Blot检测MMP-2/MMP-13的表达 | 第30页 |
| 2.7 明胶酶谱检测MMP-2/MMP-13的活性 | 第30-31页 |
| 2.8 q RT-PCR检测mi R188-5p的表达 | 第31-32页 |
| 2.9 免疫荧光染色观察CNV内MMP-2/MMP-13的表达 | 第32-33页 |
| 2.10 原位杂交观察mi R188-5p在CNV中动态表达 | 第33-34页 |
| 2.11 靶基因预测 | 第34页 |
| 2.12 统计学分析 | 第34页 |
| 3 结果 | 第34-46页 |
| 3.1 小鼠平均嵌合度分析 | 第34-35页 |
| 3.2 组织ELISA检测蛋白浓度 | 第35-36页 |
| 3.3 Western Blot检测蛋白浓度 | 第36-37页 |
| 3.4 明胶酶谱检测蛋白活性 | 第37-39页 |
| 3.5 q RT-PCR检测mi R188-5p的表达 | 第39-40页 |
| 3.6 CNV模型组小鼠视网膜脉络膜组织中组织ELISA检测的MMPs蛋白及q RT-PCR检测的mi R188-5p的表达相关性 | 第40页 |
| 3.7 CNV模型组小鼠视网膜脉络膜组织中Western Blot检测的MMPs蛋白及q RT-PCR检测的mi R188-5p的表达相关性 | 第40-41页 |
| 3.8 CNV中BMCs内表达的MMP-2/MMP-13及mi R188-5p | 第41-46页 |
| 3.9 靶基因预测 | 第46页 |
| 4 讨论 | 第46-51页 |
| 小结 | 第51-52页 |
| 参考文献 | 第52-60页 |
| 附录 | 第60-61页 |
| 个人简历和研究成果 | 第61-63页 |
| 致谢 | 第63-64页 |
