| 摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-7页 |
| 缩略词表 | 第12-13页 |
| 第1章 绪论 | 第13-19页 |
| 1.1 乳腺癌及其临床研究进展 | 第13页 |
| 1.2 2-脱氧葡萄糖 | 第13-15页 |
| 1.3 声动力疗法 | 第15-19页 |
| 1.3.1 声动力疗法简介 | 第15-17页 |
| 1.3.2 声敏剂华卟啉钠 | 第17页 |
| 1.3.3 声动力疗法在乳腺癌治疗的研究 | 第17-19页 |
| 第2章 论文的立论依据、内容和目的意义 | 第19-21页 |
| 第3章 2-脱氧葡萄糖联合DVDMS-SDT对乳腺癌的杀伤效应 | 第21-33页 |
| 3.1 实验材料和仪器 | 第21-23页 |
| 3.1.1 细胞培养 | 第21页 |
| 3.1.2 试剂及试剂配制 | 第21-23页 |
| 3.1.3 超声装置 | 第23页 |
| 3.1.4 实验仪器 | 第23页 |
| 3.2 实验方法 | 第23-28页 |
| 3.2.1 MTT法检测细胞存活 | 第23-24页 |
| 3.2.2 Caclein-AM/PI结合荧光显微镜和流式细胞仪检测细胞存活 | 第24-25页 |
| 3.2.3 DCFH-DA结合流式细胞仪检测活性氧的产生 | 第25页 |
| 3.2.4 Rho123结合流式细胞仪检测吸纳立体膜电位的变化 | 第25-26页 |
| 3.2.5 Annexin V-FITC/PI结合流式细胞仪分析处理后细胞凋亡的发生 | 第26-27页 |
| 3.2.6 Western blot检测Cleaved-Caspase 3的表达 | 第27-28页 |
| 3.3 实验结果与分析 | 第28-33页 |
| 3.3.1 2DG增敏DVDMS-SDT对三种乳腺癌细胞的毒性效应 | 第28-30页 |
| 3.3.2 2DG联合DVDMS-SDT增强4T1细胞内活性氧的产生 | 第30页 |
| 3.3.3 2DG促进DVDMS-SDT介导的线粒体膜电位的变化 | 第30-31页 |
| 3.3.4 联合处理增加了细胞凋亡的发生 | 第31页 |
| 3.3.5 2DG联合声动力疗法促进细胞内p-Caspase 3的表达 | 第31页 |
| 3.3.6 讨论 | 第31-33页 |
| 第4章 2-脱氧葡萄糖联合DVDMS-SDT对4T1乳腺癌的增殖、迁移的影响 | 第33-43页 |
| 4.1 实验仪器和材料 | 第33-34页 |
| 4.1.1 细胞培养 | 第33页 |
| 4.1.2 试剂及试剂配制 | 第33页 |
| 4.1.3 超声装置 | 第33页 |
| 4.1.4 实验仪器 | 第33-34页 |
| 4.2 实验方法 | 第34-37页 |
| 4.2.1 克隆形成检测2DG联合DVDMS-SDT对细胞增殖的影响 | 第34页 |
| 4.2.2 2DG联合DVDMS-SDT对细胞粘附的作用 | 第34页 |
| 4.2.3 划痕实验检测2DG联合DVDMS-SDT对细胞迁移的作用 | 第34-35页 |
| 4.2.4 Transwell检测2DG联合DVDMS-SDT对细胞侵袭的影响 | 第35-36页 |
| 4.2.5 扫描电子显微镜观察处理后4T1细胞表面形貌的变化 | 第36页 |
| 4.2.6 流式细胞仪检测周期的分布 | 第36-37页 |
| 4.3 实验结果与讨论 | 第37-43页 |
| 4.3.1 2DG增敏DVDMS-SDT对细胞的增殖抑制 | 第37页 |
| 4.3.2 2DG增强了声动力对细胞粘附的抑制 | 第37-38页 |
| 4.3.3 2DG联合DVDMS-SDT抑制了细胞的迁移 | 第38-39页 |
| 4.3.4 2DG增强DVDMS-SDT细胞侵袭能力的抑制 | 第39页 |
| 4.3.5 联合处理后细胞表面结构损伤严重 | 第39页 |
| 4.3.6 2DG联合DVDMS-SDT影响了细胞周期的分布 | 第39-40页 |
| 4.3.7 讨论 | 第40-43页 |
| 第5章 2-脱氧葡萄糖联合DVDMS-SDT对4T1细胞代谢的影响 | 第43-51页 |
| 5.1 实验材料和仪器 | 第43-44页 |
| 5.1.1 细胞培养 | 第43页 |
| 5.1.2 试剂及其配制 | 第43页 |
| 5.1.3 超声装置 | 第43页 |
| 5.1.4 主要仪器 | 第43-44页 |
| 5.2 实验方法 | 第44-46页 |
| 5.2.1 激光共聚焦检测DVDMS在4T1细胞内的定位 | 第44页 |
| 5.2.2 MTT法检测细胞的存活 | 第44页 |
| 5.2.3 Seahorse检测细胞的氧化磷酸化水平 | 第44-45页 |
| 5.2.4 ATP检测试剂盒检测细胞的ATP水平 | 第45页 |
| 5.2.5 免疫荧光结合MTG标记检测HK2的亚细胞定位 | 第45-46页 |
| 5.2.6 Western blot检测Glutl、HK2蛋白水平的变化 | 第46页 |
| 5.3 实验结果与讨论 | 第46-51页 |
| 5.3.1 激光共聚焦观察DVDMS在4T1细胞中与线粒体共定位 | 第46-47页 |
| 5.3.2 单独的2DG或DVDMS-SDT对4T1细胞存活的影响 | 第47页 |
| 5.3.3 2DG或DVDMS-SDT部分抑制细胞氧化磷酸化的水平 | 第47-48页 |
| 5.3.4 2DG联合DVDMS-SDT显著抑制了HK2与线粒体结合 | 第48-49页 |
| 5.3.5 2DG增强DVDMS-SDT对胞内Glutl、HK2蛋白表达的抑制 | 第49-50页 |
| 5.3.6 讨论 | 第50-51页 |
| 第6章 2-脱氧葡萄糖联合DVDMS-SDT对4T1移植瘤的抗肿瘤探究 | 第51-61页 |
| 6.1 实验材料和仪器 | 第51-52页 |
| 6.1.1 实验动物及瘤株 | 第51页 |
| 6.1.2 实验用试剂 | 第51-52页 |
| 6.1.3 超声装置 | 第52页 |
| 6.1.4 实验用仪器 | 第52页 |
| 6.2 实验方法 | 第52-55页 |
| 6.2.1 移植瘤模型的建立 | 第52页 |
| 6.2.2 实验分组及处理 | 第52-53页 |
| 6.2.3 抑瘤率指标的检测 | 第53页 |
| 6.2.4 石蜡切片制作过程 | 第53-54页 |
| 6.2.5 HE染色对组织形态学的检测 | 第54-55页 |
| 6.2.6 TUNEL凋亡试剂盒检测肿瘤组织凋亡的发生 | 第55页 |
| 6.2.7 免疫组化检测肿瘤组织不同标记蛋白的表达 | 第55页 |
| 6.3 实验结果与讨论 | 第55-61页 |
| 6.3.1 2DG增强声动力疗法对小鼠肿瘤生长的抑制 | 第55-56页 |
| 6.3.2 2DG促进DVDMS-SDT损伤肿瘤组织 | 第56-57页 |
| 6.3.3 联合作用后肿瘤组织中凋亡显著发生 | 第57页 |
| 6.3.4 2DG联合DVDMS-SDT显著抑制肿瘤组织中PCNA的表达 | 第57页 |
| 6.3.5 2DG增强DVDMS-SDT对移植瘤肺转移的抑制 | 第57-58页 |
| 6.3.6 2DG联合DVDMS-SDT显著抑制肿瘤组织Glutl、HK2的表达 | 第58-59页 |
| 6.3.7 安全性评估 | 第59页 |
| 6.3.8 讨论 | 第59-61页 |
| 第7章 总结与展望 | 第61-65页 |
| 参考文献 | 第65-73页 |
| 致谢 | 第73-75页 |
| 攻读硕士学位期间的研究成果 | 第75页 |
