| 摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 1 绪论 | 第13-30页 |
| 1.1 引言 | 第13页 |
| 1.2 胡桃楸研究现状 | 第13-17页 |
| 1.2.1 胡桃楸资源分布及生长特性 | 第13-14页 |
| 1.2.2 胡桃楸化学成分研究 | 第14-15页 |
| 1.2.3 胡桃楸的生物活性 | 第15-17页 |
| 1.3 天然产物安全性评价 | 第17-19页 |
| 1.3.1 安全性评价概述 | 第17页 |
| 1.3.2 食品安全性评价程序及方法 | 第17-19页 |
| 1.4 天然黄酮类化合物研究现状 | 第19-26页 |
| 1.4.1 黄酮类化合物概述 | 第19页 |
| 1.4.2 黄酮类化合物的分离纯化方法 | 第19-23页 |
| 1.4.3 黄酮类化合物的生物活性 | 第23-26页 |
| 1.5 黄酮类化合物抗肿瘤机制研究 | 第26-28页 |
| 1.5.1 概述 | 第26页 |
| 1.5.2 黄酮类化合物诱导肿瘤细胞凋亡 | 第26-28页 |
| 1.6 本课题研究的目的意义及主要内容 | 第28-30页 |
| 2 响应面法优化胡桃楸种仁壳总黄酮提取工艺 | 第30-40页 |
| 2.1 材料与方法 | 第30-32页 |
| 2.1.1 试验材料 | 第30-31页 |
| 2.1.2 试验方法 | 第31-32页 |
| 2.2 结果与分析 | 第32-38页 |
| 2.2.1 总黄酮含量标准曲线 | 第32-33页 |
| 2.2.2 单因素试验 | 第33-35页 |
| 2.2.3 Box-Behnken设计结果分析 | 第35-38页 |
| 2.3 讨论 | 第38-39页 |
| 2.4 本章小结 | 第39-40页 |
| 3 胡桃楸种仁壳黄酮的分离纯化 | 第40-52页 |
| 3.1 材料与方法 | 第40-43页 |
| 3.1.1 试验材料 | 第40-41页 |
| 3.1.2 试验方法 | 第41-43页 |
| 3.2 结果与分析 | 第43-50页 |
| 3.2.1 大孔树脂的筛选 | 第43-44页 |
| 3.2.2 HPD-600大孔树脂动态吸附与解吸性能 | 第44-48页 |
| 3.2.3 HPD-600大孔树脂二次纯化胡桃楸种仁壳黄酮 | 第48-49页 |
| 3.2.4 胡桃楸种仁壳黄酮组分初步分析 | 第49-50页 |
| 3.3 讨论 | 第50-51页 |
| 3.4 本章小结 | 第51-52页 |
| 4 胡桃楸种仁壳黄酮体外抗氧化作用研究 | 第52-60页 |
| 4.1 材料与方法 | 第52-54页 |
| 4.1.1 试验材料 | 第52-53页 |
| 4.1.2 试验方法 | 第53-54页 |
| 4.2 结果与分析 | 第54-58页 |
| 4.2.1 清除ABTS自由基作用 | 第54-55页 |
| 4.2.2 清除DPPH自由基作用 | 第55-56页 |
| 4.2.3 清除羟自由基作用 | 第56-57页 |
| 4.2.4 金属离子螯合作用 | 第57-58页 |
| 4.2.5 对脂质过氧化的抑制作用 | 第58页 |
| 4.3 讨论 | 第58-59页 |
| 4.4 本章小结 | 第59-60页 |
| 5 胡桃楸种仁壳黄酮的安全性评价 | 第60-70页 |
| 5.1 材料与方法 | 第60-65页 |
| 5.1.1 试验材料 | 第60-63页 |
| 5.1.2 试验方法 | 第63-65页 |
| 5.2 结果与分析 | 第65-68页 |
| 5.2.1 小鼠急性毒性试验 | 第65页 |
| 5.2.2 鼠伤寒沙门氏菌回复突变试验 | 第65-66页 |
| 5.2.3 小鼠骨髓细胞微核试验 | 第66-68页 |
| 5.3 讨论 | 第68-69页 |
| 5.4 本章小结 | 第69-70页 |
| 6 胡桃楸种仁壳黄酮抗突变和抗肿瘤活性体外研究 | 第70-82页 |
| 6.1 材料与方法 | 第70-73页 |
| 6.1.1 试验材料 | 第70-71页 |
| 6.1.2 试验方法 | 第71-73页 |
| 6.2 结果与分析 | 第73-80页 |
| 6.2.1 FSSJM-2的抗突变活性 | 第73-74页 |
| 6.2.2 FSSJM-2的抗肿瘤活性 | 第74-80页 |
| 6.3 讨论 | 第80页 |
| 6.4 本章小结 | 第80-82页 |
| 7 胡桃楸种仁壳黄酮诱导HepG-2细胞凋亡机制研究 | 第82-97页 |
| 7.1 材料与方法 | 第82-89页 |
| 7.1.1 试验材料 | 第82-86页 |
| 7.1.2 试验方法 | 第86-89页 |
| 7.2 结果与分析 | 第89-94页 |
| 7.2.1 FSSJM-2作用不同时间对HepG-2细胞增殖的影响 | 第89-90页 |
| 7.2.2 FSSJM-2对HepG-2细胞的选择性作用 | 第90页 |
| 7.2.3 FSSJM-2对HepG-2细胞凋亡形态的影响 | 第90-91页 |
| 7.2.4 流式细胞仪分析FSSJM-2对HepG-2细胞的凋亡作用 | 第91-92页 |
| 7.2.5 FSSJM-2对HepG-2细胞caspase-3蛋白酶表达的影响 | 第92-93页 |
| 7.2.6 FSSJM-2对HepG-2细胞Bcl-2和Bax蛋白表达的影响 | 第93页 |
| 7.2.7 FSSJM-2对HepG-2细胞周期分布的影响 | 第93-94页 |
| 7.3 讨论 | 第94-96页 |
| 7.4 本章小结 | 第96-97页 |
| 结论 | 第97-99页 |
| 参考文献 | 第99-115页 |
| 附录A | 第115-116页 |
| 附录B | 第116-117页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文 | 第117-118页 |
| 致谢 | 第118-119页 |
