内容提要 | 第1-8页 |
中英文缩略词表 | 第8-10页 |
第1章 绪论 | 第10-11页 |
第2章 文献综述 | 第11-22页 |
·动脉粥样硬化与内皮细胞凋亡 | 第11-13页 |
·动脉粥样硬化的内皮损伤反应学说 | 第11-12页 |
·内皮细胞凋亡及其促进动脉粥样硬化发生的依据 | 第12-13页 |
·细胞凋亡与抗凋亡的调节 | 第13-15页 |
·细胞凋亡及其信号转导通路 | 第13-14页 |
·细胞的抗凋亡作用及其信号转导通路 | 第14-15页 |
·NF-ΚB 信号转导通路在细胞凋亡中的作用 | 第15-16页 |
·NF-ΚB 与动脉粥样硬化 | 第16-17页 |
·SYK信号转导机制与细胞凋亡的关系 | 第17-18页 |
·PKC 参与动脉粥样硬化的理论依据 | 第18-19页 |
·辛伐他汀对细胞凋亡的影响 | 第19-22页 |
·关于辛伐他汀 | 第19-20页 |
·辛伐他汀与NF-κB | 第20页 |
·辛伐他汀与细胞凋亡 | 第20-22页 |
第3章 实验设计和方法 | 第22-30页 |
·实验设计 | 第22-23页 |
·理论依据 | 第22-23页 |
·实验分组 | 第23页 |
·实验材料 | 第23-25页 |
·实验仪器和设备 | 第23-24页 |
·主要试剂 | 第24-25页 |
·实验流程 | 第25-29页 |
·冻存细胞复苏 | 第25页 |
·细胞传代 | 第25页 |
·测体外培养HUVECs 生长曲线 | 第25-26页 |
·制备H202致HUVECs 凋亡模型 | 第26页 |
·MTT 法测定各组细胞增殖率 | 第26-27页 |
·TUNEL 检测各组细胞凋亡率 | 第27页 |
·Western blot 检测各组细胞NF-κB p65 亚基蛋白含量 | 第27-29页 |
·数据处理和统计方法 | 第29-30页 |
第4章 实验结果 | 第30-38页 |
·体外培养 HUVECS生长曲线 | 第30页 |
·不同信号转导通路对细胞凋亡的影响及 NF-ΚB 的作用 | 第30-33页 |
·MTT 法检测各组细胞增殖率 | 第30-31页 |
·TUNEL 法检测不同阻断剂组细胞凋亡率 | 第31-32页 |
·Western blot 检测各组NF-κB p65 蛋白含量 | 第32-33页 |
·辛伐他汀对 H202致HUVECS凋亡的影响及 NF-ΚB 的作用 | 第33-38页 |
·MTT 法检测不同浓度辛伐他汀对HUVECs 增殖率的影响.. | 第33-34页 |
·TUNEL 法检测不同辛伐他汀浓度组细胞凋亡率 | 第34-35页 |
·Western blot检测不同浓度辛伐他汀组NF-κB p65蛋白表达 | 第35-38页 |
第5章 讨论 | 第38-42页 |
·NF-ΚB 信号通路参与内皮细胞的凋亡 | 第38页 |
·PKC 信号通路在内皮细胞凋亡中的作用 | 第38-39页 |
·SYK信号通路在内皮细胞凋亡中的作用 | 第39页 |
·辛伐他汀在 H202致人脐静脉内皮细胞凋亡中的作用 | 第39-42页 |
第6章 结论 | 第42-43页 |
参考文献 | 第43-49页 |
导师及作者简介 | 第49-51页 |
致谢 | 第51-52页 |
中文摘要 | 第52-55页 |
ABSTRACT | 第55-57页 |