| 摘要 | 第9-11页 |
| Abstract | 第11-12页 |
| 第一章 序言 | 第13-19页 |
| 1 胰岛素抵抗 | 第13-15页 |
| 2 胰岛素信号障碍及相关靶点 | 第15-17页 |
| 3 复方贞术调脂方 | 第17页 |
| 4 展望 | 第17-18页 |
| 5 技术路线图 | 第18-19页 |
| 第二章 胰岛素抵抗模型的建立 | 第19-25页 |
| 1 材料 | 第19-20页 |
| 1.1 实验细胞 | 第19页 |
| 1.2 实验试剂 | 第19页 |
| 1.3 试剂配置 | 第19-20页 |
| 1.4 仪器设备 | 第20页 |
| 2 方法 | 第20-22页 |
| 2.1 细胞培养 | 第20-21页 |
| 2.2 诱导液浓度的确定 | 第21页 |
| 2.3 HepG2细胞胰岛素抵抗模型的建立 | 第21-22页 |
| 3 结果 | 第22-24页 |
| 3.1 不同浓度的油酸诱导液对HepG2细胞活力的影响 | 第22-23页 |
| 3.2 胰岛素抵抗模型的建立 | 第23页 |
| 3.3 胰岛素抵抗模型细胞的形态学变化 | 第23-24页 |
| 4 本章小结 | 第24-25页 |
| 第三章 FTZ对HepG2细胞胰岛素抵抗状态的影响 | 第25-29页 |
| 1 材料 | 第25-26页 |
| 1.1 实验细胞 | 第25页 |
| 1.2 实验试剂 | 第25页 |
| 1.3 仪器设备 | 第25-26页 |
| 2 方法 | 第26-27页 |
| 2.1 FTZ对胰岛素抵抗HepG2细胞模型的影响 | 第26-27页 |
| 3 结果 | 第27-28页 |
| 3.1 FTZ对胰岛素抵抗HepG2细胞模型的作用 | 第27-28页 |
| 4 本章小结 | 第28-29页 |
| 第四章 FTZ对胰岛素抵抗HepG2细胞中TNF-α 和IL-6 含量的影响 | 第29-38页 |
| 1 材料 | 第29-30页 |
| 1.1 实验细胞 | 第29页 |
| 1.2 实验试剂 | 第29页 |
| 1.3 试剂配置 | 第29-30页 |
| 1.4 仪器设备 | 第30页 |
| 2 方法 | 第30-33页 |
| 2.1 胰岛素抵抗HepG2细胞模型建立及给药 | 第30-31页 |
| 2.2 样品前处理 | 第31页 |
| 2.3 ELISA试剂盒检测培养基上清液TNF-α 和IL-6 的含量 | 第31-33页 |
| 3 结果 | 第33-37页 |
| 3.1 FTZ对胰岛素抵抗HepG2细胞培养基上清液中TNF-α 和IL-6 的含量的影响 | 第33-37页 |
| 4 本章小结 | 第37-38页 |
| 第五章 FTZ对胰岛素抵抗HepG2细胞信号转导蛋白NF-κB、IRS1、GLUT4表达的影响 | 第38-49页 |
| 1 材料 | 第38-41页 |
| 1.1 实验细胞 | 第38页 |
| 1.2 Western blot试剂 | 第38页 |
| 1.3 试剂配制 | 第38-40页 |
| 1.4 仪器设备 | 第40-41页 |
| 2 方法 | 第41-45页 |
| 2.1 胰岛素抵抗HepG2细胞模型建立及给药 | 第41-42页 |
| 2.2 细胞中总蛋白提取 | 第42-43页 |
| 2.3 Western Blot | 第43-45页 |
| 2.4 数据分析 | 第45页 |
| 3 结果 | 第45-48页 |
| 3.1 FTZ对胰岛素抵抗HepG2细胞中NF-κB蛋白相对表达量的影响 | 第45-46页 |
| 3.2 FTZ对胰岛素抵抗HepG2细胞中IRS1蛋白相对表达量的影响 | 第46-47页 |
| 3.3 FTZ对胰岛素抵抗HepG2细胞中GLUT4蛋白相对表达量的影响 | 第47-48页 |
| 4 本章小结 | 第48-49页 |
| 第六章 FTZ对NF-κB阻断后胰岛素抵抗HepG2细胞中IRS1蛋白表达的影响 | 第49-57页 |
| 1 材料 | 第49-50页 |
| 1.1 实验细胞 | 第49页 |
| 1.2 Western blot试剂 | 第49页 |
| 1.3 仪器设备 | 第49-50页 |
| 2 方法 | 第50-52页 |
| 2.1 PDTC最佳使用浓度的筛选 | 第50-51页 |
| 2.2 加入PDTC阻断NF-κB后，给以FTZ对胰岛素抵抗的HepG2细胞IRS1蛋白表达的影响 | 第51-52页 |
| 3 结果 | 第52-55页 |
| 3.1 PDTC抑制浓度的筛选和确定 | 第52-53页 |
| 3.2 加入PDTC阻断NF-κB后，给以FTZ对胰岛素抵抗的HepG2细胞IRS1蛋白表达的影响 | 第53-55页 |
| 4 本章小结 | 第55-57页 |
| 第七章 FTZ中女贞子和齐墩果酸对胰岛素抵抗的作用 | 第57-63页 |
| 1 材料 | 第57-58页 |
| 1.1 实验细胞 | 第57页 |
| 1.2 实验试剂 | 第57页 |
| 1.3 试剂配置 | 第57-58页 |
| 1.4 仪器设备 | 第58页 |
| 2 方法 | 第58-60页 |
| 2.1 女贞子给药浓度范围的确定 | 第58页 |
| 2.2 齐墩果酸给药浓度范围确定 | 第58-59页 |
| 2.3 FTZ、女贞子和齐墩果酸对胰岛素抵抗HepG2细胞模型的作用 | 第59-60页 |
| 3 结果 | 第60-62页 |
| 3.1 女贞子给药浓度的筛选 | 第60-61页 |
| 3.2 齐墩果酸给药浓度的筛选 | 第61页 |
| 3.3 FTZ、女贞子和齐墩果酸对胰岛素抵抗HepG2细胞模型的作用 | 第61-62页 |
| 4 本章小结 | 第62-63页 |
| 第八章 齐墩果酸对胰岛素抵抗HepG2细胞中TNF-α 和IL-6 含量的影响 | 第63-70页 |
| 1 材料 | 第63-64页 |
| 1.1 实验细胞 | 第63页 |
| 1.2 实验试剂 | 第63页 |
| 1.3 试剂配置 | 第63页 |
| 1.4 仪器设备 | 第63-64页 |
| 2 方法 | 第64-65页 |
| 2.1 胰岛素抵抗HepG2细胞模型建立及给药 | 第64-65页 |
| 2.2 样品前处理 | 第65页 |
| 2.3 ELISA试剂盒检测培养基上清液TNF-α 和IL-6 的含量 | 第65页 |
| 3 结果 | 第65-69页 |
| 3.1 齐墩果酸对胰岛素抵抗HepG2细胞培养基上清液中TNF-α 和IL-6 的含量的影响 | 第65-69页 |
| 4 本章小结 | 第69-70页 |
| 第九章 齐墩果酸对胰岛素抵抗HepG2细胞信号转导蛋白NF-κB、IRS1、GLUT4表达的影响 | 第70-76页 |
| 1 材料 | 第70-71页 |
| 1.1 实验细胞 | 第70页 |
| 1.2 Western blot试剂 | 第70页 |
| 1.3 试剂配制 | 第70页 |
| 1.4 仪器设备 | 第70-71页 |
| 2 方法 | 第71-72页 |
| 2.1 胰岛素抵抗HepG2细胞模型建立及给药 | 第71-72页 |
| 2.2 细胞中总蛋白提取 | 第72页 |
| 2.3 Western Blot | 第72页 |
| 3 结果 | 第72-75页 |
| 3.1 齐墩果酸对胰岛素抵抗HepG2细胞中NF-κB蛋白相对表达量的影响 | 第72-73页 |
| 3.2 齐墩果酸对胰岛素抵抗HepG2细胞中IRS1蛋白相对表达量的影响 | 第73-74页 |
| 3.3 齐墩果酸对胰岛素抵抗HepG2细胞中GLUT4蛋白相对表达量的影响 | 第74-75页 |
| 4 本章小结 | 第75-76页 |
| 第十章 齐墩果酸对NF-κB阻断后胰岛素抵抗HepG2细胞中IRS1蛋白表达的影响 | 第76-82页 |
| 1 材料 | 第76-77页 |
| 1.1 实验细胞 | 第76页 |
| 1.2 Western blot试剂 | 第76页 |
| 1.3 仪器设备 | 第76-77页 |
| 2 方法 | 第77-78页 |
| 2.1 加入PDTC阻断NF-κB后，给以齐墩果酸对胰岛素抵抗的HepG2细胞IRS1蛋白表达的影响 | 第77-78页 |
| 3 结果 | 第78-80页 |
| 3.1 加入PDTC阻断NF-κB后，给以齐墩果酸对胰岛素抵抗的HepG2细胞IRS1蛋白表达的影响 | 第78-80页 |
| 4 本章小结 | 第80-82页 |
| 第十一章 讨论与展望 | 第82-85页 |
| 参考文献 | 第85-90页 |
| 攻读学位期间参与发表论文 | 第90-91页 |
| 中英文缩略词表 | 第91-92页 |
| 致谢 | 第92-93页 |
