| 中文摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-8页 |
| 縮略语/符号说明 | 第13-14页 |
| 前言 | 第14-18页 |
| 研究现状、成果 | 第14-15页 |
| 研究目的、方法 | 第15-18页 |
| 一、应用深度增强成像相干光断层扫描测量正常人群后极部脉络膜厚度分布及影响因素的研究 | 第18-29页 |
| 1.1 对象和方法 | 第18-20页 |
| 1.1.1 研究对象纳入标准 | 第18页 |
| 1.1.2 研究对象排除标准 | 第18页 |
| 1.1.3 主要仪器设备 | 第18页 |
| 1.1.4 一般资料采集及眼部检查方法 | 第18-19页 |
| 1.1.5 脉络膜厚度检查方法及质量控制 | 第19页 |
| 1.1.6 统计学分析 | 第19-20页 |
| 1.2 结果 | 第20-24页 |
| 1.2.1 一般资料情况 | 第20页 |
| 1.2.2 性别与黄斑中心凹下脉络膜厚度的关系 | 第20页 |
| 1.2.3 眼别与黄斑中心凹下脉络膜厚度的关系 | 第20-21页 |
| 1.2.4 年龄与黄斑中心凹下脉络膜厚度的关系 | 第21-22页 |
| 1.2.5 各象限距黄斑中心凹不同距离的脉络膜厚度的变化趋势 | 第22-24页 |
| 1.3 讨论 | 第24-28页 |
| 1.3.1 糖尿病患者脉络膜血管结构病理改变 | 第24-25页 |
| 1.3.2 增强深度成像相干光断层扫描技术的临床应用 | 第25-26页 |
| 1.3.3 应用深度增强成像相干光断层扫描测量正常人群后极部脉络膜厚度分布特征分析 | 第26-27页 |
| 1.3.4 正常人群后极部脉络膜厚度影响因素的研究分析 | 第27-28页 |
| 1.4 小结 | 第28-29页 |
| 二、糖尿病视网膜病变的病变黄斑区脉络膜厚度变化的深度增强成像相干光断层扫描研究 | 第29-38页 |
| 2.1 对象和方法 | 第29-31页 |
| 2.1.1 研究对象筛选与分组 | 第29页 |
| 2.1.2 排除标准 | 第29-30页 |
| 2.1.3 主要仪器设备 | 第30页 |
| 2.1.4 一般资料收集及眼部检查方法 | 第30-31页 |
| 2.1.5 黄斑中心凹下脉络膜厚度检查方法 | 第31页 |
| 2.1.6 统计学分析 | 第31页 |
| 2.2 结果 | 第31-35页 |
| 2.2.1 不同组间一般临床资料的对比分析 | 第31-32页 |
| 2.2.2 不同阶段糖尿病视网膜病变组与正常人黄斑区脉络膜厚度的差异 | 第32-33页 |
| 2.2.3 不伴糖尿病黄斑水肿的糖尿病患者之间黄斑区脉络膜厚度特征及差异比较 | 第33-35页 |
| 2.3 讨论 | 第35-37页 |
| 2.3.1 糖尿病视网膜病变与正常人群黄斑区脉络膜厚度的差异分析 | 第35-36页 |
| 2.3.2 糖尿病视网膜病变的演进中黄斑中心凹脉络膜厚度的趋势性变化分析 | 第36-37页 |
| 2.4 小结 | 第37-38页 |
| 三、糖尿病黄斑水肿黄斑区脉络膜厚度变化及其影响因素的研究 | 第38-52页 |
| 3.1 对象和方法 | 第38-41页 |
| 3.1.1 研究对象筛选与分组 | 第38页 |
| 3.1.2 研究对象排除标准 | 第38-39页 |
| 3.1.3 主要检查分析仪器设备 | 第39页 |
| 3.1.4 研究对象基本参数及生化指标的测量 | 第39页 |
| 3.1.5 眼科检查及OCT测量图像采集 | 第39-40页 |
| 3.1.6 统计学分析 | 第40-41页 |
| 3.2 结果 | 第41-46页 |
| 3.2.1 一般临床资料及对比 | 第41页 |
| 3.2.2 合并糖尿病黄斑水肿的非增生性糖尿病视网膜病变与正常人群的黄斑区脉络膜厚度的比较 | 第41页 |
| 3.2.3 合并糖尿病黄斑水肿的非增生性糖尿病视网膜病变与无糖尿病黄斑水肿的非增生性糖尿病视网膜病变黄斑区脉络膜厚度比较 | 第41-43页 |
| 3.2.4 基于OCT特征不同类型糖尿病黄斑水肿黄斑区脉络膜厚度的比较 | 第43页 |
| 3.2.5 糖尿病黄斑水肿脉络膜厚度变化及全身影响因素的分析 | 第43-46页 |
| 3.3 讨论 | 第46-50页 |
| 3.3.1 糖尿病黄斑水肿黄斑区脉络膜厚度变化的对比分析 | 第46-48页 |
| 3.3.2 合并糖尿病黄斑水肿的非增生性糖尿病视网膜病变的黄斑区脉络膜厚度变化相关影响因素分析 | 第48-50页 |
| 3.3.3 LDL和UAER与合并糖尿病黄斑水肿的非增生性糖尿病视网膜病变脉络膜厚度的相关性分析 | 第50页 |
| 3.4 小结 | 第50-52页 |
| 四、体外原代培养SD大鼠视网膜muller细胞的纯化与鉴定 | 第52-62页 |
| 4.1 研究对象与方法 | 第54-57页 |
| 4.1.1 主要仪器设备 | 第54-55页 |
| 4.1.2 主要试剂和实验动物 | 第55-56页 |
| 4.1.3 SD大鼠视网膜muller细胞的体外原代培养方法 | 第56-57页 |
| 4.1.4 免疫细胞化学染色法鉴定体外培养的视网膜muller细胞 | 第57页 |
| 4.2 结果 | 第57-59页 |
| 4.2.1 体外原代培养的SD大鼠视网膜muller细胞形态学特点 | 第57-58页 |
| 4.2.2 体外培养的SD大鼠视网膜muller细胞的鉴定 | 第58-59页 |
| 4.3 讨论 | 第59-61页 |
| 4.3.1 视网膜muller细胞体外原代培养纯化方法 | 第59-60页 |
| 4.3.2 体外培养视网膜muler细胞的鉴定方法分析 | 第60-61页 |
| 4.4 小结 | 第61-62页 |
| 五、PPARγ基因Pro12Ala单核苷酸多态性与不同阶段糖尿病视网膜病变关系的研究 | 第62-76页 |
| 5.1 研究对象和方法 | 第63-68页 |
| 5.1.1 研究对象分组 | 第63-64页 |
| 5.1.2 研究对象纳入和排除标准 | 第64页 |
| 5.1.3 研究对象临床资料收集和生化指标 | 第64页 |
| 5.1.4 主要实验设备和试剂 | 第64-65页 |
| 5.1.5 基因组DNA的提取 | 第65-67页 |
| 5.1.6 PCR反应体系的建立和反应条件 | 第67-68页 |
| 5.1.7 PCR扩增产物目标序列测定 | 第68页 |
| 5.1.8 统计学分析 | 第68页 |
| 5.2 结果 | 第68-71页 |
| 5.2.1 不同组间一般临床资料对比分析 | 第68-69页 |
| 5.2.2 Prol2Ala基因型和等位基因在各组间分布情况 | 第69-70页 |
| 5.2.3 Pro12Ala位点等位基因在各组间的分布频率 | 第70页 |
| 5.2.4 不同基因型糖尿病视网膜病变患者与各项生化指标关系比 | 第70-71页 |
| 5.3 讨论 | 第71-74页 |
| 5.3.1 过氧化物酶增殖物活化受体亚型及主要功能 | 第71-72页 |
| 5.3.2 PPAR_γ基因的Pro12Ala单核苷酸多态性与糖尿病视网膜病变关系分析 | 第72-73页 |
| 5.3.3 Prol2Ala位点不同基因型之间生化指标的比较分析 | 第73-74页 |
| 5.4 小结 | 第74-76页 |
| 全文结论 | 第76-77页 |
| 论文创新点 | 第77-78页 |
| 参考文献 | 第78-89页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第89-90页 |
| 综述 | 第90-105页 |
| 综述参考文献 | 第99-105页 |
| 致谢 | 第105页 |
