| 致谢 | 第5-6页 |
| 摘要 | 第6-8页 |
| ABSTRACT | 第8-10页 |
| 缩略词简表(Abbreviations) | 第11-16页 |
| 第一章 绪论 | 第16-29页 |
| 1.1 手性及手性药物 | 第16-19页 |
| 1.1.1 手性及手性药物的概述 | 第16-17页 |
| 1.1.2 手性药物的药效差异 | 第17-18页 |
| 1.1.3 手性药物的制备方法 | 第18-19页 |
| 1.2 微生物转化法概述 | 第19-23页 |
| 1.2.1 微生物转化法的主要类型 | 第19-20页 |
| 1.2.2 微生物转化的主要方法及特点 | 第20-22页 |
| 1.2.3 微生物转化的影响因素 | 第22-23页 |
| 1.3 水/有机溶剂两相体系中微生物不对称还原羰基化合物 | 第23-25页 |
| 1.3.1 微生物不对称还原羰基化合物的反应机理 | 第23-24页 |
| 1.3.2 微生物不对称还原羰基化合物的辅酶再生 | 第24页 |
| 1.3.3 水/有机溶剂两相体系中微生物不对称还原羰基化合物 | 第24-25页 |
| 1.4 界面自组装酶生物催化 | 第25-26页 |
| 1.4.1 细胞固定化技术 | 第25页 |
| 1.4.2 界面自组装酶不对称还原 | 第25-26页 |
| 1.5 托莫西汀 | 第26-27页 |
| 1.5.1 注意缺陷多动障碍 | 第26页 |
| 1.5.2 托莫西汀概述 | 第26页 |
| 1.5.3 托莫西汀中间体(R)-3-羟基-3-苯基丙酸乙酯 | 第26-27页 |
| 1.6 本论文的研究内容 | 第27-28页 |
| 1.7 本论文的研究意义 | 第28-29页 |
| 第二章 有机溶剂对热带假丝酵母C.tropicalis CGMCC NO.15016毒性研究 | 第29-38页 |
| 2.1 引言 | 第29页 |
| 2.2 实验材料 | 第29-32页 |
| 2.2.1 菌种 | 第29页 |
| 2.2.2 试剂与仪器 | 第29-31页 |
| 2.2.3 培养基 | 第31-32页 |
| 2.3 实验及分析方法 | 第32-34页 |
| 2.3.1 培养方法 | 第32页 |
| 2.3.2 DNS法测定葡萄糖浓度 | 第32页 |
| 2.3.3 有机溶剂对细胞毒性的检测方法 | 第32-33页 |
| 2.3.4 底物对细胞的毒性实验 | 第33页 |
| 2.3.5 底物与产物的分析方法 | 第33页 |
| 2.3.6 数据处理方法 | 第33-34页 |
| 2.4 结果与讨论 | 第34-37页 |
| 2.4.1 葡萄糖标准曲线 | 第34页 |
| 2.4.2 不同有机溶剂对细胞的毒性 | 第34-35页 |
| 2.4.3 细胞的代谢活力与log P值关系 | 第35-36页 |
| 2.4.4 有机溶剂对不同生长期细胞的毒性 | 第36页 |
| 2.4.5 底物对细胞代谢活力的影响 | 第36-37页 |
| 本章小结 | 第37-38页 |
| 第三章 水/有机溶剂两相体系中不对称还原制备(R)-3-羟基-3-苯基丙酸乙酯 | 第38-48页 |
| 3.1 引言 | 第38-39页 |
| 3.2 实验材料 | 第39页 |
| 3.2.1 菌种 | 第39页 |
| 3.2.2 试剂与仪器 | 第39页 |
| 3.2.3 培养基 | 第39页 |
| 3.3 实验方法 | 第39-41页 |
| 3.3.1 培养方法 | 第39页 |
| 3.3.2 分析方法 | 第39页 |
| 3.3.3 热带假丝酵母C. tropicalis CGMCC NO.15016还原转化反应条件优化 | 第39-41页 |
| 3.4 结果与讨论 | 第41-47页 |
| 3.4.1 不对称还原转化反应条件优化结果 | 第41-46页 |
| 3.4.2 两相体系与单一水相体系的比较 | 第46-47页 |
| 本章小结 | 第47-48页 |
| 第四章 界面自组装羰基还原酶不对称还原制备(R)-3-羟基-3-苯基丙酸乙酯 | 第48-61页 |
| 4.1 引言 | 第48-49页 |
| 4.2 实验材料 | 第49页 |
| 4.2.1 菌种 | 第49页 |
| 4.2.2 试剂与仪器 | 第49页 |
| 4.2.3 培养基 | 第49页 |
| 4.3 实验方法 | 第49-53页 |
| 4.3.1 培养方法 | 第49-50页 |
| 4.3.2 分析方法 | 第50页 |
| 4.3.3 羰基还原酶的制备 | 第50页 |
| 4.3.4 界面自组装羰基还原酶的制备 | 第50页 |
| 4.3.5 CR和IACR的蛋白质含量及活力测定 | 第50-51页 |
| 4.3.6 界面自组装羰基还原酶制备条件优化 | 第51-52页 |
| 4.3.7 界面自组装羰基还原酶还原转化条件优化 | 第52-53页 |
| 4.3.8 界面自组装羰基还原酶与游离羰基还原酶的比较 | 第53页 |
| 4.4 结果与讨论 | 第53-60页 |
| 4.4.1 界面自组装羰基还原酶的最优制备条件测定 | 第53-55页 |
| 4.4.2 界面自组装羰基还原酶还原转化的最优条件测定 | 第55-59页 |
| 4.4.3 界面自组装羰基还原酶与游离羰基还原酶的比较 | 第59-60页 |
| 本章小结 | 第60-61页 |
| 第五章 界面自组装羰基还原酶的催化反应机理和动力学 | 第61-78页 |
| 5.1 引言 | 第61页 |
| 5.2 动力学模型的建立 | 第61-65页 |
| 5.2.1 反应机理 | 第61-62页 |
| 5.2.2 模型推导 | 第62-65页 |
| 5.3 实验材料 | 第65-66页 |
| 5.3.1 菌种 | 第65页 |
| 5.3.2 培养基 | 第65页 |
| 5.3.3 试剂与仪器 | 第65-66页 |
| 5.4 实验方法 | 第66-68页 |
| 5.4.1 菌体培养及界面自组装羰基还原酶制备 | 第66页 |
| 5.4.2 界面自组装酶的生物还原反应 | 第66页 |
| 5.4.4 分析方法 | 第66-68页 |
| 5.5 结果与讨论 | 第68-77页 |
| 5.5.1 还原反应中生物细胞内辅酶含量 | 第68-71页 |
| 5.5.2 反应动力学模型的应用 | 第71-74页 |
| 5.5.3 底物浓度和反应速度随时间变化的情况 | 第74-76页 |
| 5.5.4 反应速度随NADH浓度和底物浓度的变化情况 | 第76-77页 |
| 本章小结 | 第77-78页 |
| 总结与展望 | 第78-80页 |
| 参考文献 | 第80-86页 |
| 硕士期间发表的论文和专利 | 第86页 |
