| 摘要 | 第4-7页 |
| Abstract | 第7-11页 |
| 英文缩略语 | 第12-18页 |
| 第一部分 ：病例筛选和CXCL9蛋白在子痫前期胎盘滋养细胞中的定位表达差异 | 第18-35页 |
| 1 前言 | 第18-21页 |
| 2 材料和方法 | 第21-30页 |
| 2.1 研究对象和分组 | 第21页 |
| 2.2 主要试剂和主要仪器 | 第21-23页 |
| 2.2.1 主要试剂 | 第21-22页 |
| 2.2.2 主要仪器 | 第22-23页 |
| 2.3 实验方法 | 第23-30页 |
| 2.3.1 标本的收集和处理 | 第23页 |
| 2.3.2 免疫组织化学染色 | 第23-24页 |
| 2.3.3 WesternBlot | 第24-27页 |
| 2.3.4 Real-timePCR | 第27-29页 |
| 2.3.5 阳性结果判定 | 第29页 |
| 2.3.6 统计学分析 | 第29-30页 |
| 3 结果 | 第30-33页 |
| 3.1 临床资料分析 | 第30页 |
| 3.2 胎盘组织中CXCL9的表达 | 第30-33页 |
| 3.2.1 免疫组化检测CXCL9蛋白在子痫前期胎盘的定位表达 | 第30-31页 |
| 3.2.2 WesternBlot检测胎盘组织中CXCL9蛋白的表达 | 第31-32页 |
| 3.2.3 Real-timePCR检测胎盘组织中CXCL9mRNA的表达 | 第32-33页 |
| 4 讨论 | 第33-34页 |
| 5 结论 | 第34-35页 |
| 第二部分 ：CXCL9对滋养细胞HTR8/Svneo增殖、迁移和侵袭的影响 | 第35-47页 |
| 1 前言 | 第35-37页 |
| 2 材料与方法 | 第37-41页 |
| 2.1 研究对象 | 第37页 |
| 2.2 主要试剂和仪器 | 第37-38页 |
| 2.2.1 主要试剂 | 第37页 |
| 2.2.2 主要仪器 | 第37-38页 |
| 2.3 实验方法 | 第38-41页 |
| 2.3.1 滋养细胞HTR-8/SVneo的细胞培养 | 第38页 |
| 2.3.2 CXCL9转染滋养细胞HTR-8/SVneo | 第38-39页 |
| 2.3.3 细胞增殖能力的测定 | 第39页 |
| 2.3.4 细胞迁移能力的测定 | 第39-40页 |
| 2.3.5 细胞侵袭能力的测定 | 第40页 |
| 2.3.6 统计学分析 | 第40-41页 |
| 3 结果 | 第41-45页 |
| 3.1 滋养细胞HTR-8/SVneoshRNA慢病毒感染结果 | 第41页 |
| 3.2 CXCL9对滋养细胞HTR-8/SVneo增殖能力的影响 | 第41-42页 |
| 3.3 CXCL9对滋养细胞HTR-8/SVneo迁移及侵袭能力的影响 | 第42-45页 |
| 4 讨论 | 第45-46页 |
| 5 结论 | 第46-47页 |
| 第三部分 ：CXCL9影响滋养细胞HTR-8/SVneo侵袭机制的研究 | 第47-55页 |
| 1 前言 | 第47-48页 |
| 2 材料与方法 | 第48-51页 |
| 2.1 研究对象 | 第48页 |
| 2.2 主要试剂和仪器 | 第48页 |
| 2.2.1 主要试剂 | 第48页 |
| 2.2.2 主要仪器 | 第48页 |
| 2.3 实验方法 | 第48-51页 |
| 2.3.1 滋养细胞HTR-8/SVneo的细胞培养 | 第48-49页 |
| 2.3.2 CXCL9转染HTR-8/SVneo细胞 | 第49页 |
| 2.3.3 Western Blot | 第49-50页 |
| 2.3.4 检测Akt通路与MMP-2和MMP-9表达的关系 | 第50页 |
| 2.3.5 统计学分析 | 第50-51页 |
| 3 结果 | 第51-53页 |
| 3.1 CXCL9促进MMP-2及MMP-9的表达 | 第51-52页 |
| 3.2 Akt抑制剂抑制MMP-2和MMP-9的表达 | 第52-53页 |
| 4 讨论 | 第53-54页 |
| 5 结论 | 第54-55页 |
| 本研究创新性的自我评价 | 第55-56页 |
| 参考文献 | 第56-63页 |
| 综述 | 第63-71页 |
| 参考文献 | 第67-71页 |
| 攻读学位期间取得的研究成果 | 第71-72页 |
| 致谢 | 第72-73页 |
| 个人简介 | 第73页 |
