| 摘要 | 第4-6页 |
| abstract | 第6-7页 |
| 第一章 绪论 | 第10-17页 |
| 1.1 S100A1结构及其生理学意义 | 第10-11页 |
| 1.2 S100A1调节心肌细胞Ca~(2+)的平衡 | 第11-13页 |
| 1.3 S100A1通过一氧化氮调节内皮功能障碍 | 第13-14页 |
| 1.4 S100A1靶向心脏成纤维细胞 | 第14页 |
| 1.5 S100A1蛋白基因治疗及其临床研究 | 第14-15页 |
| 1.6 S100A1蛋白调节线粒体功能及ATP的相互作用 | 第15页 |
| 1.7 本研究的工作思路 | 第15-17页 |
| 第二章 S100A1与ANT蛋白在运动氧化应激损伤心肌组织中的表达分布 | 第17-29页 |
| 2.1 材料和试剂 | 第17-20页 |
| 2.1.1 实验材料 | 第17-18页 |
| 2.1.2 主要仪器 | 第18页 |
| 2.1.3 主要溶液的配制方法 | 第18-20页 |
| 2.2 主要实验方法 | 第20-23页 |
| 2.2.1 建立大鼠运动氧化应激损伤模型 | 第20-21页 |
| 2.2.2 大鼠样本采集处理 | 第21页 |
| 2.2.3 酶联免疫法测定生化指标 | 第21页 |
| 2.2.4 大鼠心肌组织包埋 | 第21页 |
| 2.2.5 HE染色 | 第21-22页 |
| 2.2.6 免疫组化 | 第22页 |
| 2.2.7 Western-Blot检测心肌组织中S100A1和ANT蛋白的表达 | 第22-23页 |
| 2.3 统计学分析 | 第23-24页 |
| 2.4 实验结果 | 第24-28页 |
| 2.4.1 生化指标的检测结果 | 第24-26页 |
| 2.4.2 HE染色结果 | 第26页 |
| 2.4.3 电镜检测结果 | 第26-27页 |
| 2.4.4 免疫组化结果 | 第27-28页 |
| 2.4.5 Western-Blot实验结果 | 第28页 |
| 2.5 小结 | 第28-29页 |
| 第三章 S100A1蛋白对氧化应激损伤心肌线粒体功能的影响及调控 | 第29-43页 |
| 3.1 材料和试剂 | 第29-30页 |
| 3.1.1 主要材料 | 第29页 |
| 3.1.2 主要试剂 | 第29-30页 |
| 3.1.3 主要仪器 | 第30页 |
| 3.2 主要实验方法 | 第30-34页 |
| 3.2.1 细胞培养 | 第30-31页 |
| 3.2.2 细胞冻存 | 第31页 |
| 3.2.3 细胞复苏 | 第31页 |
| 3.2.4 细胞计数 | 第31页 |
| 3.2.5 细胞转染 | 第31-32页 |
| 3.2.6 建立H9c2心肌细胞氧化应激模型 | 第32页 |
| 3.2.7 细胞形态学变化 | 第32页 |
| 3.2.8 DCFH-DA测定细胞内的ROS | 第32页 |
| 3.2.9 RT-PCR法检测细胞中mRNA的表达 | 第32-34页 |
| 3.2.10 Western-Blot检测细胞中S100A1、ANT等因子的蛋白表达 | 第34页 |
| 3.3 统计学分析 | 第34-35页 |
| 3.4 实验结果 | 第35-42页 |
| 3.4.1 建立大鼠H9c2心肌细胞氧化应激损伤模型 | 第35-36页 |
| 3.4.2 H9c2细胞氧化应激损伤后的形态变化 | 第36页 |
| 3.4.3 S100A1对氧化损伤H9c2细胞中ROS含量的影响 | 第36页 |
| 3.4.4 酶联免疫方法测定MDA、SOD、GSH-PX、CK活性 | 第36-38页 |
| 3.4.5 S100A1对氧化损伤H9c2细胞S100A1等mRNA和蛋白表达影响 | 第38-40页 |
| 3.4.6 S100A1基因敲除对H9c2细胞S100A1等mRNA和蛋白表达影响 | 第40-42页 |
| 3.5 小结 | 第42-43页 |
| 讨论 | 第43-45页 |
| 结论 | 第45-46页 |
| 参考文献 | 第46-50页 |
| 附录 | 第50-52页 |
| 发表论文和科研情况说明 | 第52-53页 |
| 致谢 | 第53页 |
