| 摘要 | 第10-14页 |
| ABSTRACT | 第14-19页 |
| 符号说明 | 第20-22页 |
| 第一章 前言 | 第22-38页 |
| 1 骨关节炎 | 第22-32页 |
| 1.1 OA的发病机制及治疗研究 | 第22-24页 |
| 1.2 OA的模型建立 | 第24-31页 |
| 1.3 几类治疗OA的多糖类药物 | 第31-32页 |
| 2 黄原胶的研究现状 | 第32-37页 |
| 2.1 XG的结构和性质 | 第32-33页 |
| 2.2 XG的生产 | 第33-36页 |
| 2.3 XG在医药领域的应用 | 第36-37页 |
| 3 课题的研究目的和意义 | 第37-38页 |
| 第二章 注射用黄原胶原料药的制备 | 第38-44页 |
| 1 材料 | 第38-39页 |
| 1.1 菌种 | 第38页 |
| 1.2 实验试剂 | 第38页 |
| 1.3 实验仪器 | 第38-39页 |
| 2 方法 | 第39-42页 |
| 2.1 培养基的配制 | 第39页 |
| 2.2 菌种活化 | 第39-40页 |
| 2.3 XG的发酵生产与分离纯化 | 第40-41页 |
| 2.4 XG相对分子质量(M_w)与M_w分布测定 | 第41-42页 |
| 2.5 XG质量控制 | 第42页 |
| 3 结果 | 第42-43页 |
| 4 本章结语 | 第43-44页 |
| 第三章 黄原胶注射液治疗膝骨关节炎的体内试验 | 第44-68页 |
| 1. 材料 | 第44-45页 |
| 1.1 实验动物 | 第44页 |
| 1.2 实验试剂和药品 | 第44-45页 |
| 1.3 实验仪器 | 第45页 |
| 2. 方法 | 第45-55页 |
| 2.1 KOA动物模型造模方法 | 第45-46页 |
| 2.2 实验动物分组和给药 | 第46页 |
| 2.3 标本采集 | 第46-47页 |
| 2.4 观察指标与方法 | 第47-55页 |
| 2.5 统计学处理 | 第55页 |
| 3 结果 | 第55-65页 |
| 3.1 给药13周后检测结果 | 第55-60页 |
| 3.2 给药26周后检测结果 | 第60-63页 |
| 3.3 部分因子mRNA表达结果 | 第63-65页 |
| 3.4 部分因子蛋白表达结果 | 第65页 |
| 4 本章结语 | 第65-68页 |
| 第四章 黄原胶对体外培养的兔软骨细胞作用的研究 | 第68-92页 |
| 1 材料 | 第68-69页 |
| 1.1 实验动物 | 第68页 |
| 1.2 实验试剂和药品 | 第68-69页 |
| 1.3 仪器设备 | 第69页 |
| 2 方法 | 第69-79页 |
| 2.1 培养液配制 | 第69-70页 |
| 2.2 兔膝关节原代软骨细胞的获取与培养 | 第70-71页 |
| 2.3 兔膝关节原代软骨细胞的鉴定 | 第71-72页 |
| 2.4 噻唑蓝(MTT)实验 | 第72页 |
| 2.5 兔软骨细胞活性检测 | 第72-73页 |
| 2.6 XG对兔软骨细胞细胞周期的影响 | 第73页 |
| 2.7 XG对脂多糖诱导兔软骨细胞氧化损伤的影响 | 第73-78页 |
| 2.8 XG对LPS诱导软骨细胞产生IL-1β、TNF-α、PGE_2的影响 | 第78页 |
| 2.9 XG对LPS诱导兔软骨细胞部分因子mRNA和蛋白表达的影响 | 第78-79页 |
| 2.10 统计学分析方法 | 第79页 |
| 3 结果 | 第79-90页 |
| 3.1 软骨细胞的培养及鉴定 | 第79-80页 |
| 3.2 MTT实验结果 | 第80-81页 |
| 3.3 兔软骨细胞活性检测结果 | 第81页 |
| 3.4 XG对兔软骨细胞细胞周期的影响 | 第81-82页 |
| 3.5 荧光酶标仪检测ROS结果 | 第82-83页 |
| 3.6 流式细胞仪检测ROS结果 | 第83-84页 |
| 3.7 XG对LPS诱导兔软骨细胞产生NO、MDA、SOD的影响 | 第84-86页 |
| 3.8 XG对LPS诱导兔软骨细胞产生PGE_2、TNF-α、IL-1β的影响 | 第86-88页 |
| 3.9 XG对LPS诱导兔软骨细胞部分细胞因子mRNA表达的影响 | 第88-89页 |
| 3.10 XG对LPS诱导兔软骨细胞部分细胞因子蛋白表达的影响 | 第89-90页 |
| 4 本章结语 | 第90-92页 |
| 总结与展望 | 第92-94页 |
| 参考文献 | 第94-107页 |
| 致谢 | 第107-108页 |
| 攻读学位期间发表的论文 | 第108-109页 |
| 附表 | 第109页 |
