| 中文摘要 | 第3-8页 |
| Abstract | 第8-13页 |
| 缩略词表 | 第17-19页 |
| 引言 | 第19-23页 |
| 实验研究 | 第23-102页 |
| 一.Graves病小鼠模型的建立及评价 | 第23-44页 |
| 1.材料 | 第23-25页 |
| 1.1 实验动物 | 第23页 |
| 1.2 饲养环境及饲料 | 第23页 |
| 1.3 造模药物 | 第23-24页 |
| 1.4 主要仪器 | 第24页 |
| 1.5 主要试剂及耗材 | 第24-25页 |
| 2.Ad-TSHR-289的扩增、浓缩、纯化与滴度测定 | 第25-28页 |
| 2.1 质粒制备 | 第25页 |
| 2.2 AdCMV_TSHR289/Flag(Dsredexpress2)腺病毒包装、纯化与滴度检测 | 第25-28页 |
| 3.随机分组及给药方法 | 第28-29页 |
| 3.1 分组及给药方法 | 第28页 |
| 3.2 病毒免疫方法 | 第28-29页 |
| 3.3 免疫周期 | 第29页 |
| 4.观察指标及方法 | 第29-31页 |
| 4.1 标本采集和处理 | 第29-30页 |
| 4.2 检测指标 | 第30-31页 |
| 5.统计方法 | 第31页 |
| 6.实验结果 | 第31-37页 |
| 6.1 小鼠的一般情况比较 | 第31页 |
| 6.2 造模期各组小鼠每周平均摄食量比较 | 第31-32页 |
| 6.3 造模期各组小鼠每周平均饮水量比较 | 第32-34页 |
| 6.4 造模期各组小鼠每周体重比较 | 第34页 |
| 6.5 造模期各组小鼠每周体温比较 | 第34-35页 |
| 6.6 造模期各组小鼠T3、T4、TRAb水平比较 | 第35-36页 |
| 6.7 甲状腺病理结果 | 第36-37页 |
| 讨论 | 第37-43页 |
| 1.Graves病动物模型造模方法的探讨 | 第37-41页 |
| 1.1 Ad-TSHR-289造模的干预模式探讨 | 第38-39页 |
| 1.2 小鼠种系及性别的选择 | 第39-41页 |
| 2.动物模型的评价 | 第41-43页 |
| 小结 | 第43-44页 |
| 二.丹栀复方治疗Graves病小鼠的量-效与时-效关系研究 | 第44-75页 |
| 1.材料 | 第44-45页 |
| 1.1 实验动物 | 第44页 |
| 1.2 饲养的环境及饲料 | 第44页 |
| 1.3 实验药品 | 第44页 |
| 1.4 主要试剂及测试盒 | 第44-45页 |
| 1.5 主要仪器和材料 | 第45页 |
| 2.实验方法 | 第45-46页 |
| 2.1 分组 | 第45页 |
| 2.2 给药方法 | 第45-46页 |
| 3.观测指标及检测 | 第46-47页 |
| 3.1 小鼠的一般情况 | 第46页 |
| 3.2 小鼠的饮食、饮水量 | 第46页 |
| 3.3 小鼠的体温、体重 | 第46页 |
| 3.4 小鼠甲状腺病理 | 第46-47页 |
| 3.5 小鼠血清T3、T4、TSH、TRAb水平 | 第47页 |
| 3.6 小鼠肝脏MDA、SOD、CAT水平 | 第47页 |
| 4.统计方法 | 第47页 |
| 5.结果 | 第47-62页 |
| 5.1 各组小鼠一般情况比较 | 第47-54页 |
| 5.2 小鼠血清检测结果 | 第54-58页 |
| 5.3 小鼠肝脏氧化应激指标结果 | 第58-61页 |
| 5.4 甲状腺病理结果 | 第61-62页 |
| 讨论 | 第62-74页 |
| 1.复发率高是Graves病治疗亟待解决的难题 | 第62-63页 |
| 2.肝气郁滞是Graves病的病机关键 | 第63-64页 |
| 3.肝与甲状腺的内在联系支持Graves病从“肝”论治的可行性 | 第64-66页 |
| 4.从“肝”论治Graves病古有渊源,且临床疗效确切 | 第66-67页 |
| 5.丹栀复方体现从“肝”论治思想 | 第67-72页 |
| 5.1 丹栀复方的选方依据 | 第67-68页 |
| 5.2 丹栀复方的前期临床观察 | 第68页 |
| 5.3 丹栀复方的组方原理 | 第68-71页 |
| 5.4 现代药理学的研究 | 第71-72页 |
| 6.阳性对照药物的选择 | 第72-74页 |
| 小结 | 第74-75页 |
| 三、丹栀复方对肝脏Nrf-2/HO-1信号通路及甲状腺组织Bcl-2、Bax的影响 | 第75-102页 |
| 1.材料 | 第75-76页 |
| 1.1 实验动物 | 第75页 |
| 1.2 实验药品 | 第75页 |
| 1.3 主要试剂及测试盒 | 第75页 |
| 1.4 主要仪器和材料 | 第75-76页 |
| 2.给药方法 | 第76页 |
| 3.观测指标及检测 | 第76-80页 |
| 3.1 Real-TimePCR检测肝细胞中Nrf-2、HO-1基因表达 | 第76-78页 |
| 3.2 WesternBlot法检测肝脏中Nrf-2、HO-1蛋白及甲状腺组织中Bcl-2、Bax的表达 | 第78-80页 |
| 4.统计方法 | 第80-81页 |
| 5.结果 | 第81-92页 |
| 5.1 各组小鼠肝脏Nrf-2mRNA的表达水平比较 | 第81-82页 |
| 5.2 各组小鼠肝脏HO-1mRNA的表达水平比较 | 第82-83页 |
| 5.3 各组小鼠肝脏Nrf-2蛋白的表达水平比较 | 第83-84页 |
| 5.4 各组小鼠肝脏HO-1蛋白的表达水平比较 | 第84-86页 |
| 5.5 各组小鼠甲状腺组织中Bcl-2表达水平比较 | 第86-87页 |
| 5.7 各组小鼠甲状腺组织中Bax含量比较 | 第87-89页 |
| 5.8 TRAb与MDA、SOD、CAT的相关性分析 | 第89-90页 |
| 5.9 MDA、SOD、CAT与Bcl-2、Bax的相关性分析 | 第90页 |
| 5.10 MDA、SOD、CAT与Nrf-2/HO-1通路的相关性分析 | 第90-92页 |
| 讨论 | 第92-101页 |
| 1.TRAb与甲状腺大小是影响复发的重要危险因素 | 第92-93页 |
| 2.氧化应激参与Graves病的发病过程 | 第93-95页 |
| 3.氧化应激影响Graves病复发相关因素,参与疾病复发过程 | 第95-97页 |
| 3.1 氧化应激参与Graves病的自身免疫紊乱及炎症反应过程 | 第95-96页 |
| 3.2 氧化应激参与细胞凋亡的调节,从而影响甲状腺大小 | 第96-97页 |
| 4.抗氧化治疗有益于Graves病的预后 | 第97-98页 |
| 5.Nrf-2及其调控的下游基因在机体抗氧化中发挥重要作用 | 第98-101页 |
| 小结 | 第101-102页 |
| 特色与创新 | 第102-103页 |
| 结论 | 第103-104页 |
| 问题与展望 | 第104-105页 |
| 致谢 | 第105-106页 |
| 参考文献 | 第106-115页 |
| 文献综述 | 第115-126页 |
| 参考文献 | 第123-126页 |
| 在校期间公开发表的学术论文 | 第126-127页 |
