| 摘要 | 第6-7页 |
| abstract | 第7-8页 |
| 第1章 绪论 | 第12-18页 |
| 1.1 藏医药的特色和优势 | 第12-13页 |
| 1.2 脑缺血的研究概况 | 第13-15页 |
| 1.2.1 脑缺血现代医学研究近况 | 第13-14页 |
| 1.2.2 脑缺血藏医药史上研究概况和特色 | 第14-15页 |
| 1.3 三个藏药经典方的研究进展 | 第15-18页 |
| 第2章 脑缺血相关因素细胞筛选模型的构建 | 第18-24页 |
| 2.1 实验材料 | 第18页 |
| 2.2 实验方法 | 第18-21页 |
| 2.2.1 HEK293细胞的培养 | 第18页 |
| 2.2.2 质粒DNA转染 | 第18-19页 |
| 2.2.3 细胞冻存与复苏 | 第19-21页 |
| 2.2.4 BCA蛋白含量测定 | 第21页 |
| 2.3 实验结果 | 第21-23页 |
| 2.3.1 稳定细胞株的构建 | 第21-22页 |
| 2.3.2 荧光素酶活性的测定 | 第22-23页 |
| 2.4 讨论 | 第23-24页 |
| 第3章 三个藏药经典方中抗脑缺血药效物质基础的探讨 | 第24-34页 |
| 3.1 三个藏药经典方中主要化学成分 | 第24页 |
| 3.2 三个藏药经典方特征图谱中主要成分的确认 | 第24-27页 |
| 3.3 实验内容 | 第27-30页 |
| 3.3.1 实验材料 | 第27-28页 |
| 3.3.2 贮存液的配制 | 第28页 |
| 3.3.3 17个单体成分的cck-8细胞毒性测定 | 第28页 |
| 3.3.4 17个单体成分的活性筛选 | 第28-29页 |
| 3.3.5 Luciferase(荧光素酶)活性测定 | 第29页 |
| 3.3.6 BCA蛋白含量测定 | 第29-30页 |
| 3.4 实验结果 | 第30-33页 |
| 3.4.1 贮存液的配制 | 第30页 |
| 3.4.2 HEK293-A细胞模型的筛选 | 第30-31页 |
| 3.4.3 HEK293-B细胞模型的筛选 | 第31-32页 |
| 3.4.4 HEK293-C细胞模型的筛选 | 第32-33页 |
| 3.5 讨论 | 第33-34页 |
| 第4章 骨髓间充质干细胞药效验证 | 第34-65页 |
| 4.1 实验材料 | 第34页 |
| 4.2 实验方法 | 第34-38页 |
| 4.2.1 rMSC的分离培养 | 第34-35页 |
| 4.2.2 rMSC的加药诱导 | 第35页 |
| 4.2.3 总RNA的提取 | 第35-36页 |
| 4.2.4 cDNA反转录 | 第36-37页 |
| 4.2.5 Real-Time定量PCR | 第37页 |
| 4.2.6 免疫荧光 | 第37-38页 |
| 4.3 实验结果 | 第38-63页 |
| 4.3.1 rMSC的分离培养 | 第38-39页 |
| 4.3.2 rMSC的加药诱导 | 第39-45页 |
| 4.3.3 总RNA的提取 | 第45-46页 |
| 4.3.4 cDNA反转录 | 第46-49页 |
| 4.3.5 Real-Time定量PCR | 第49-51页 |
| 4.3.6 免疫荧光 | 第51-63页 |
| 4.4 讨论 | 第63-65页 |
| 结论 | 第65-67页 |
| 致谢 | 第67-68页 |
| 参考文献 | 第68-71页 |
| 攻读硕士学位期间发表的论文及科研成果 | 第71页 |
