中英文缩略词对照 | 第7-8页 |
中文摘要 | 第8-11页 |
英文摘要 | 第11-12页 |
1 前言 | 第13-16页 |
2 材料与方法 | 第16-31页 |
2.1 实验材料 | 第16-21页 |
2.1.1 实验动物 | 第16页 |
2.1.2 实验虫株 | 第16页 |
2.1.3 实验细胞 | 第16页 |
2.1.4 实验质粒 | 第16页 |
2.1.5 实验主要试剂 | 第16-17页 |
2.1.6 实验主要试剂的配置 | 第17-20页 |
2.1.7 实验主要仪器 | 第20-21页 |
2.2 实验方法 | 第21-31页 |
2.2.1 弓形虫在小鼠体内的复苏、传达、收集和冻存 | 第21-22页 |
2.2.2 C17.2神经干细胞的复苏、传达、冻存 | 第22-23页 |
2.2.3 ROP18重组腺病毒的构建 | 第23-25页 |
2.2.4 ROP18重组腺病毒在C17.2神经干细胞上的表达 | 第25页 |
2.2.5 荧光染色(核染)检测ROP18重组腺病毒转染至C17.2神干细胞上后对细胞的凋亡影响 | 第25页 |
2.2.6 CCK-8法检测ROP18重组腺病毒转染至C17.2神经干细胞上细胞的增殖活力 | 第25-26页 |
2.2.7 流式细胞术检测ROP18重组腺病毒转染至C17.2神干细胞上后对细胞的凋亡影响 | 第26-28页 |
2.2.8 免疫印迹法检测ROP18重组腺病毒对C17.2神经干细中凋亡蛋白表达的影响 | 第28-29页 |
2.2.9 免疫印迹法检测C17.2神经干胞分化中βⅢ-tubulin蛋白及Wnt信号通路中相关蛋白的表达 | 第29-30页 |
2.2.10 双荧光素酶实验(Luciferase)检测Wnt信号通路活性 | 第30页 |
2.2.11 统计学分析 | 第30-31页 |
3 结果 | 第31-41页 |
3.1 pHBAd-MCMV-GFP-ROP18重组腺病毒载体的构建 | 第31-32页 |
3.2 ROP18重组腺病毒在C17.2神经干细胞上的表达 | 第32-33页 |
3.3 ROP18重组腺病毒对C17.2神经干细胞起增殖抑制作用 | 第33-34页 |
3.4 ROP18重组腺病毒对C17.2神经干细胞起促凋亡作用 | 第34-36页 |
3.5 ROP18重组腺病毒抑制C17.2神经干细胞分化 | 第36-41页 |
3.5.1 ROP18重组腺病毒抑制神经元特异性标志蛋白βⅢ-tubulin的表达 | 第36-38页 |
3.5.2 ROP18重组腺病毒抑制Wnt信号通路活性 | 第38-41页 |
4 讨论 | 第41-43页 |
5 结论 | 第43-44页 |
参考文献 | 第44-47页 |
附一 个人简历 | 第47-48页 |
附二 致谢 | 第48-49页 |
附三 综述 | 第49-58页 |
参考文献 | 第54-58页 |