| 摘要 | 第3-5页 |
| ABSTRACT | 第5-6页 |
| 中英文缩略词表 | 第9-11页 |
| 第1章 引言 | 第11-14页 |
| 第2章 材料与方法 | 第14-27页 |
| 2.1 主要实验材料和试剂 | 第14-16页 |
| 2.1.1 实验细胞株 | 第14页 |
| 2.1.2 主要仪器设备 | 第14-15页 |
| 2.1.3 主要试剂 | 第15-16页 |
| 2.1.4 试剂配制 | 第16页 |
| 2.2 实验方法 | 第16-26页 |
| 2.2.1 培养人脐静脉内皮细胞与人外周血单核细胞系 | 第16-17页 |
| 2.2.2 ox-LDL及PPARγ 抑制剂、激动剂分别与HUVECs孵育 | 第17页 |
| 2.2.3 质粒DNA提取 | 第17-19页 |
| 2.2.4 DNA的产量与质量检测： | 第19页 |
| 2.2.5 转染 | 第19页 |
| 2.2.6 分组培养 | 第19页 |
| 2.2.7 Western blot操作步骤 | 第19-23页 |
| 2.2.8 荧光定量RT-PCR检测mRNA表达 | 第23-25页 |
| 2.2.9 单核细胞粘附实验 | 第25-26页 |
| 2.3 数据处理 | 第26-27页 |
| 第3章 结果 | 第27-37页 |
| 3.1 不同浓度ox-LDL对HUVEC中ICAM1、eNOS、HSP22及PPARγ 蛋白表达的影响 | 第27-28页 |
| 3.2 HSP22对内皮功能与其激活及对单核细胞的粘附的影响 | 第28-33页 |
| 3.2.1 HSP22质粒转染后的效率及HSP22表达 | 第28-30页 |
| 3.2.2 HSP22对HUVEC中PPARγmRNA的影响 | 第30-31页 |
| 3.2.3 HSP22对ox-LDL诱导的内皮功能及其激活的影响 | 第31-32页 |
| 3.2.4 HSP22的表达对ox-LDL诱导内皮对单核细胞粘附的影响 | 第32-33页 |
| 3.3 PPARγ 激动剂比格列酮对HSP22表达的影响 | 第33-34页 |
| 3.4 HSP22蛋白对ox-LDL处理的HUVEC细胞内皮功能与激活及其对单核细胞粘附影响的可能机制 | 第34-37页 |
| 3.4.1 HSP22蛋白对ox-LDL处理的HUVEC细胞ICAM1和eNOS表达影响的机制 | 第34-36页 |
| 3.4.2 HSP22的表达对ox-LDL诱导的HUVEC对THP1细胞粘附的影响 | 第36-37页 |
| 第4章 讨论 | 第37-41页 |
| 4.1 HSP22在ox-LDL诱导环境下的表达 | 第37-38页 |
| 4.2 HSP22与ICAM1、eNOS | 第38-39页 |
| 4.3 PPARγ 与ICAM1、eNOS | 第39-40页 |
| 4.4 HSP22与PPARγ | 第40-41页 |
| 第5章 结论与展望 | 第41-42页 |
| 5.1 结论 | 第41页 |
| 5.2 不足之处 | 第41-42页 |
| 致谢 | 第42-43页 |
| 参考文献 | 第43-47页 |
| 综述 Sirt1与动脉粥样硬化的研究进展 | 第47-56页 |
| 参考文献 | 第54-56页 |
