摘要 | 第5-6页 |
ABSTRACT | 第6-7页 |
第1章 绪论 | 第10-29页 |
1.1 海洋生态系统中的底栖动物 | 第10-12页 |
1.1.1 海洋生态系统的结构功能 | 第10-11页 |
1.1.2 扇贝营养价值及研究现状 | 第11-12页 |
1.2 多糖分子在生态学研究中的应用 | 第12-15页 |
1.3 生物体内多糖提取与分析技术 | 第15-19页 |
1.3.1 多糖的提取技术 | 第15-16页 |
1.3.2 多糖的纯化技术 | 第16-18页 |
1.3.3 多糖的色谱分析技术 | 第18-19页 |
1.4 稳定同位素在海洋生态学研究中的应用 | 第19-26页 |
1.4.1 稳定同位素技术的基本原理 | 第20-22页 |
1.4.2 稳定同位素在海洋生物及食物网研究中的应用 | 第22-24页 |
1.4.3 稳定同位素技术在生物食品溯源分析中的应用 | 第24-25页 |
1.4.4 多糖碳稳定同位素的应用 | 第25-26页 |
1.5 研究目的、意义及主要内容 | 第26-29页 |
1.5.1 研究目的与意义 | 第26-27页 |
1.5.2 研究主要内容与技术路线 | 第27-29页 |
第2章 虾夷扇贝多糖提取纯化方法优化 | 第29-44页 |
2.1 实验材料及研究方法 | 第29-33页 |
2.1.1 实验材料 | 第29页 |
2.1.2 仪器与设备 | 第29-30页 |
2.1.3 实验研究方法 | 第30-33页 |
2.2 试验结果 | 第33-41页 |
2.2.1 虾夷扇贝多糖提取工艺优化结果 | 第33-35页 |
2.2.2 TCA脱蛋白工艺优化结果 | 第35-38页 |
2.2.3 GDL脱蛋白工艺优化结果 | 第38-40页 |
2.2.4 两种脱蛋白方法对比 | 第40-41页 |
2.3 讨论 | 第41-43页 |
2.4 小结 | 第43-44页 |
第3章 虾夷扇贝多糖组成的地域性差异 | 第44-58页 |
3.1 实验材料和方法 | 第44-48页 |
3.1.1 扇贝样品的采集 | 第44-46页 |
3.1.2 实验试剂和设备 | 第46页 |
3.1.3 样品的预处理 | 第46-47页 |
3.1.4 多糖水解及衍生化 | 第47页 |
3.1.5 样品的气相色谱测定 | 第47-48页 |
3.1.6 样品数据的分析 | 第48页 |
3.2 结果分析 | 第48-55页 |
3.2.1 不同地区虾夷扇贝的粗多糖含量 | 第48-50页 |
3.2.2 不同地区虾夷扇贝多糖含量组成 | 第50-55页 |
3.3 讨论 | 第55-57页 |
3.4 小结 | 第57-58页 |
第4章 虾夷扇贝多糖碳稳定同位素组成的地域性差异 | 第58-72页 |
4.1 实验材料和方法 | 第59-61页 |
4.1.1 扇贝样品的采集 | 第59页 |
4.1.2 实验试剂和设备 | 第59页 |
4.1.3 样品预处理 | 第59页 |
4.1.4 多糖水解及衍生化 | 第59页 |
4.1.5 扇贝全样的碳、氮稳定同位素测定 | 第59-60页 |
4.1.6 扇贝单糖碳稳定同位素测定 | 第60-61页 |
4.1.7 样品数据分析 | 第61页 |
4.2 结果分析 | 第61-68页 |
4.2.1 不同地区虾夷扇贝全样碳氮稳定同位素组成 | 第61-64页 |
4.2.2 不同地区虾夷扇贝单糖碳稳定同位素组成特征 | 第64-68页 |
4.3 讨论 | 第68-71页 |
4.4 小结 | 第71-72页 |
第5章 结论与展望 | 第72-75页 |
5.1 结论 | 第72-73页 |
5.2 主要创新点 | 第73页 |
5.3 展望 | 第73-75页 |
参考文献 | 第75-86页 |
攻读学位期间公开发表论文 | 第86-87页 |
致谢 | 第87-88页 |
作者简介 | 第88页 |