| 中文摘要 | 第5-7页 |
| 英文摘要 | 第7-8页 |
| 缩略词表 | 第9-14页 |
| 前言 | 第14-17页 |
| 第一章 文献综述 | 第17-22页 |
| 1.1 妊娠期糖尿病与血管内皮细胞结构 | 第17-19页 |
| 1.1.1 GDM并发症与胎盘血管内皮细胞的完整性 | 第17页 |
| 1.1.2 血管内皮细胞的结构 | 第17-18页 |
| 1.1.3 GDM状态下胎盘血管内皮细胞结构变化 | 第18-19页 |
| 1.2 妊娠期糖尿病与内皮细胞功能 | 第19-20页 |
| 1.2.1 血管内皮细胞功能 | 第19页 |
| 1.2.2 GDM状态下内皮细胞功能变化 | 第19-20页 |
| 1.2.2.1 GDM母体血管内皮细胞功能变化 | 第19-20页 |
| 1.2.2.2 GDM胎盘胎儿面血管内皮细胞功能变化 | 第20页 |
| 1.2.2.3 GDM母亲子代血管内皮细胞功能变化 | 第20页 |
| 1.3 结语 | 第20-22页 |
| 第二章 实验材料和方法 | 第22-33页 |
| 2.1 实验材料 | 第22-25页 |
| 2.1.1 主要试剂 | 第22-23页 |
| 2.1.2 常规试剂的配置 | 第23-24页 |
| 2.1.3 主要仪器设备 | 第24-25页 |
| 2.1.4 动物准备 | 第25页 |
| 2.2 实验方法和步骤 | 第25-32页 |
| 2.2.1 妊娠期糖尿病模型建立 | 第25页 |
| 2.2.2 LMWH干预方法 | 第25页 |
| 2.2.3 标本采集 | 第25-26页 |
| 2.2.4 Miles Assay检测胎盘血管渗漏情况 | 第26-27页 |
| 2.2.4.1 Evans Blue标准曲线制作 | 第26页 |
| 2.2.4.2 大鼠尾静脉注射Evans Blue | 第26页 |
| 2.2.4.3 组织收集及组织中Evans Blue的提取 | 第26页 |
| 2.2.4.4 组织中Evans Blue定量测定 | 第26-27页 |
| 2.2.5 Western Blot检测蛋白质表达 | 第27-28页 |
| 2.2.5.1 组织总蛋白质提取 | 第27页 |
| 2.2.5.2 蛋白质样品制备 | 第27页 |
| 2.2.5.3 SDS-PAGE | 第27页 |
| 2.2.5.4 转膜 | 第27-28页 |
| 2.2.5.5 封闭 | 第28页 |
| 2.2.5.6 与一抗反应 | 第28页 |
| 2.2.5.7 与二抗反应 | 第28页 |
| 2.2.5.8 显色 | 第28页 |
| 2.2.6 RT-PCR检测方法 | 第28-31页 |
| 2.2.6.1 胎盘组织总RNA的提取 | 第28-29页 |
| 2.2.6.2 RNA浓度及纯度测定 | 第29页 |
| 2.2.6.3 反转录 | 第29页 |
| 2.2.6.4 定量PCR | 第29-30页 |
| 2.2.6.5 结果处理 | 第30-31页 |
| 2.2.7 ELISA法测定AGEs水平 | 第31-32页 |
| 2.3 统计学处理 | 第32-33页 |
| 第三章 实验结果 | 第33-38页 |
| 3.1 妊娠期糖尿病模型建立 | 第33页 |
| 3.2 Miles Assay检测胎盘血管渗漏情况 | 第33-35页 |
| 3.2.1 胎盘组织Evans Blue染色 | 第33-34页 |
| 3.2.2 Miles Assay定量测定胎盘EB含量 | 第34-35页 |
| 3.3 胎盘中紧密连接蛋白Occludin的表达水平 | 第35页 |
| 3.4 胎盘中VEGF和RAGE基因的表达水平 | 第35-36页 |
| 3.5 孕鼠血清中AGEs的表达水平 | 第36-38页 |
| 第四章 讨论 | 第38-41页 |
| 第五章 结论 | 第41-42页 |
| 第六章 总结与展望 | 第42-43页 |
| 6.1 总结 | 第42页 |
| 6.2 展望 | 第42-43页 |
| 参考文献 | 第43-52页 |
| 致谢 | 第52-53页 |
| 作者简介 | 第53页 |
