| 摘要 | 第4-7页 |
| Abstract | 第7-9页 |
| 第1章 文献综述 | 第14-22页 |
| 1.1 激活素 | 第14-15页 |
| 1.1.1 激活素的分子特征 | 第14页 |
| 1.1.2 激活素的信号传导 | 第14-15页 |
| 1.1.2.1 经典的Smads信号转导 | 第14-15页 |
| 1.1.2.2 非经典的MAPKs信号转导 | 第15页 |
| 1.1.3 激活素的生物学作用 | 第15页 |
| 1.2 乳腺癌 | 第15-16页 |
| 1.2.1 乳腺癌的现状 | 第15-16页 |
| 1.2.2 激活素与乳腺癌的关系 | 第16页 |
| 1.3 激活素与炎症的关系 | 第16-17页 |
| 1.4 肿瘤相关中性粒细胞与乳腺癌 | 第17页 |
| 1.5 细胞迁移 | 第17-18页 |
| 1.6 微流体技术 | 第18-20页 |
| 1.6.1 微流体发展简述 | 第18-19页 |
| 1.6.2 微流体芯片在生物、化学领域中的应用 | 第19-20页 |
| 1.7 本课题研究目的、内容和特色 | 第20-22页 |
| 1.7.1 本课题的研究目的 | 第20页 |
| 1.7.2 研究内容 | 第20页 |
| 1.7.3 本课题的研究特色 | 第20-22页 |
| 第2章 材料与方法 | 第22-30页 |
| 2.1 实验细胞 | 第22页 |
| 2.2 实验试剂 | 第22-23页 |
| 2.3 相关实验试剂的配制 | 第23页 |
| 2.3.1 磷酸盐缓冲液PBS的配制 | 第23页 |
| 2.3.2 胰酶的配制 | 第23页 |
| 2.3.3 Western blotting试剂的配制 | 第23页 |
| 2.4 实验仪器 | 第23-24页 |
| 2.5 实验方法 | 第24-29页 |
| 2.5.1 微流体芯片的准备 | 第24-25页 |
| 2.5.2 细胞分离和培养 | 第25页 |
| 2.5.3 MDA-MB-231 细胞培养上清液制备 | 第25页 |
| 2.5.4 微流体细胞迁移实验 | 第25-26页 |
| 2.5.5 RT-PCR | 第26-27页 |
| 2.5.6 Western blotting | 第27-29页 |
| 2.5.7 流式细胞术检测钙离子水平 | 第29页 |
| 2.6 统计学分析 | 第29-30页 |
| 第3章 实验结果 | 第30-41页 |
| 3.1 三通道微流体芯片的设计使用 | 第30-31页 |
| 3.2 Activin A对人乳腺癌细胞系MDA-MB-231 细胞迁移影响 | 第31-35页 |
| 3.2.1 Activin A 促进 MDA-MB-231 细胞迁移 | 第31-32页 |
| 3.2.2 Activin A促进MDA-MB-231 细胞EGFR表达 | 第32-33页 |
| 3.2.3 Activin A促进MDA-MB-231 细胞ERK表达 | 第33-34页 |
| 3.2.4 Activin A促进MDA-MB-231 细胞钙离子浓度升高 | 第34-35页 |
| 3.3 Activin A对人中性粒细胞迁移的影响 | 第35-39页 |
| 3.3.1 Activin A抑制fMLP诱导的人中性粒细胞迁移 | 第35-36页 |
| 3.3.2 Activin A抑制fMLP诱导人中性粒细胞穿越HUVEC细胞层 | 第36-38页 |
| 3.3.3 Activin A下调fMLP诱导的人中性粒细胞胞内钙离子浓度 | 第38-39页 |
| 3.4 肿瘤细胞培养上清液诱导人中性粒细胞迁移 | 第39-41页 |
| 第4章 讨论 | 第41-45页 |
| 4.1 Activin A对MDA-MB-231 细胞迁移的作用 | 第42-43页 |
| 4.2 Activin A对人中性粒细胞迁移的作用 | 第43-44页 |
| 4.3 肿瘤细胞培养上清液诱导人中性粒细胞迁移 | 第44-45页 |
| 第5章 结论 | 第45-46页 |
| 参考文献 | 第46-54页 |
| 作者简介及攻读硕士期间取得的成果 | 第54-55页 |
| 致谢 | 第55页 |
