| 中文摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 第一章 绪论 | 第12-39页 |
| 1.1 引言 | 第12-13页 |
| 1.2 硅纳米颗粒的发展 | 第13-24页 |
| 1.2.1 硅纳米颗粒的合成方法 | 第13-21页 |
| 1.2.2 硅纳米颗粒的表面修饰 | 第21-24页 |
| 1.3 生物荧光成像 | 第24-28页 |
| 1.4 本论文选题依据和研究内容 | 第28-29页 |
| 参考文献 | 第29-39页 |
| 第二章：用蛋白作为亲水性配体微波辅助合成生物功能化的荧光硅纳米颗粒 | 第39-60页 |
| 2.1 引言 | 第39-40页 |
| 2.2 实验部分 | 第40-43页 |
| 2.2.1 实验试剂 | 第40页 |
| 2.2.2 实验步骤 | 第40-42页 |
| 2.2.3 仪器表征 | 第42-43页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第43-52页 |
| 2.3.1 TEM/HRTEM和DLS表征 | 第43-45页 |
| 2.3.2 FTIR和EDX表征 | 第45-46页 |
| 2.3.3 UV-PL光谱表征 | 第46-47页 |
| 2.3.4 硅纳米颗粒pH稳定性的研究 | 第47-48页 |
| 2.3.5 硅纳米颗粒光稳定性和储存稳定性的研究 | 第48-49页 |
| 2.3.6 硅纳米颗粒的细胞毒性测试及免疫荧光细胞成像 | 第49-52页 |
| 2.4 本章结论 | 第52-53页 |
| 参考文献 | 第53-60页 |
| 第三章：水相大规模合成具有优异荧光性质和良好生物相容性的硅纳米颗粒及其作为生物荧光探针在生物成像中的应用 | 第60-80页 |
| 3.1 引言 | 第60-61页 |
| 3.2 实验部分 | 第61-64页 |
| 3.2.1 实验试剂 | 第61页 |
| 3.2.2 实验步骤 | 第61-63页 |
| 3.2.3 仪器表征 | 第63-64页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第64-74页 |
| 3.3.1 自下而上合成硅纳米颗粒的理论模型 | 第64-65页 |
| 3.3.2 TEM/HRTEM和DLS表征 | 第65-67页 |
| 3.3.3 FTIR和EDX表征 | 第67-68页 |
| 3.3.4 硅纳米颗粒的UV/PL光学性质表征 | 第68-69页 |
| 3.3.5 异氰酸荧光素（FITC）、CdTe量子点、CdSe/ZnS量子点和硅纳米颗粒的光稳定性的对比 | 第69-70页 |
| 3.3.6 硅纳米颗粒的细胞毒性的测试 | 第70-71页 |
| 3.3.7 硅纳米颗粒pH稳定性的研究 | 第71页 |
| 3.3.8 硅纳米颗粒与免疫球蛋白共轭连接 | 第71-72页 |
| 3.3.9 用硅纳米颗粒进行长程的免疫荧光细胞标记 | 第72-74页 |
| 3.4 本章结论 | 第74页 |
| 参考文献 | 第74-80页 |
| 第四章：快速简捷大规模水相大量合成波长可调的硅纳米颗粒及其长程细胞成像应用 | 第80-111页 |
| 4.1 引言 | 第80-81页 |
| 4.2 实验部分 | 第81-84页 |
| 4.2.1 实验试剂 | 第81页 |
| 4.2.2 实验步骤 | 第81-84页 |
| 4.2.3 仪器表征 | 第84页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第84-102页 |
| 4.3.1 光化学合成荧光硅纳米颗粒 | 第84-87页 |
| 4.3.2 硅纳米颗粒荧光强度的调节 | 第87-89页 |
| 4.3.3 调节硅纳米颗粒的荧光颜色 | 第89-92页 |
| 4.3.4 硅纳米颗粒的XRD和FTIR表征 | 第92-95页 |
| 4.3.5 硅纳米颗粒的储存稳定性和光稳定性 | 第95-98页 |
| 4.3.6 硅纳米颗粒的pH稳定性和细胞毒性的测试 | 第98-100页 |
| 4.3.7 SiNPs/IgG共轭连接及免疫荧光成像 | 第100-102页 |
| 4.4 本章结论 | 第102-103页 |
| 参考文献 | 第103-111页 |
| 第五章 论文总结 | 第111-115页 |
| 5.1 论文总结 | 第111-112页 |
| 5.2 论文的创新点 | 第112-113页 |
| 5.3 研究展望 | 第113-115页 |
| 攻读学位期间本人出版或公开发表的论著、论文 | 第115-118页 |
| 致谢 | 第118-120页 |
