| 摘要 | 第4-8页 |
| ABSTRACT | 第8-11页 |
| 绪论 | 第16-18页 |
| 第一部分 兔硬脑膜缺损修补后对脑脊液炎性指标的影响 | 第18-25页 |
| 1.材料 | 第18-19页 |
| 1.1 主要试剂、耗材及仪器 | 第18页 |
| 1.2 细菌纤维素膜的制备 | 第18-19页 |
| 1.3 实验动物来源 | 第19页 |
| 2.方法 | 第19-21页 |
| 2.1 实验动物的分组及处理 | 第19页 |
| 2.2 手术方法 | 第19-20页 |
| 2.3 术后处理 | 第20页 |
| 2.4 脑脊液的提取 | 第20页 |
| 2.5 细菌学涂片、白细胞、葡萄糖、蛋白质等指标的检测 | 第20-21页 |
| 3.结果 | 第21-22页 |
| 3.1 细菌学涂片 | 第21页 |
| 3.2 白细胞 | 第21页 |
| 3.3 葡萄糖 | 第21-22页 |
| 3.4 蛋白质 | 第22页 |
| 4.讨论 | 第22-24页 |
| 4.1 动物模型的建立 | 第22-23页 |
| 4.2 脑脊液的采集 | 第23页 |
| 4.3 脑脊液炎症指标的改变及意义 | 第23-24页 |
| 5.小结 | 第24-25页 |
| 第二部分 优化细菌纤维素膜的制备及修补兔硬膜缺损后的组织学观察 | 第25-31页 |
| 1.材料 | 第25-26页 |
| 1.1 主要试剂与耗材 | 第25页 |
| 1.2 主要仪器与设备 | 第25-26页 |
| 2.方法 | 第26-28页 |
| 2.1 优化细菌纤维素膜的制备 | 第26页 |
| 2.2 动物实验 | 第26-27页 |
| 2.3 组织化学染色 | 第27-28页 |
| 3.结果 | 第28-29页 |
| 3.1 术后动物生命体征状况 | 第28页 |
| 3.2 标本大体观察 | 第28-29页 |
| 3.3 组织学镜下观察 | 第29页 |
| 4.讨论 | 第29-30页 |
| 4.1 优化细菌纤维素膜的安全性 | 第29页 |
| 4.2 优化细菌纤维素膜作为硬脑膜替代材料的作用及其机制 | 第29-30页 |
| 5.小结 | 第30-31页 |
| 第三部分 不同类型细菌纤维素膜修补硬膜缺损后组织炎症因子的检测 | 第31-47页 |
| 1.材料 | 第32-34页 |
| 1.1 主要试剂与耗材 | 第32-33页 |
| 1.2 主要仪器与设备 | 第33-34页 |
| 2.方法 | 第34-41页 |
| 2.1 动物实验 | 第34页 |
| 2.2 RT-PCR检测炎症因子TNF-α、IL-6、IL-1β的表达 | 第34-38页 |
| 2.3 Western Blot技术检测移植后iNOS、COX-2 的含量 | 第38-41页 |
| 3.结果 | 第41-45页 |
| 3.1 荧光定量PCR检测TNF-α、IL-6 及IL-1β结果分析 | 第41-42页 |
| 3.2 Western Blot检测iNOS、COX-2 结果分析 | 第42-45页 |
| 4.讨论 | 第45-46页 |
| 4.1 优化细菌纤维素膜的特性 | 第45页 |
| 4.2 优化细菌纤维素膜修补硬膜缺损后对机体局部炎症反应的影响 | 第45-46页 |
| 5.小结 | 第46-47页 |
| 参考文献 | 第47-51页 |
| 附图 | 第51-57页 |
| 综述 | 第57-65页 |
| 参考文献 | 第61-65页 |
| 攻读硕士学位期间已发表或录用的论文 | 第65页 |
| 攻读硕士学位期间参与的课题 | 第65-66页 |
| 中英文缩略词表 | 第66-67页 |
| 致谢 | 第67-69页 |
