| 中英文缩写词表 | 第6-8页 |
| 中文摘要 | 第8-10页 |
| Abstract | 第10-12页 |
| 1 前言 | 第13-15页 |
| 2 实验材料 | 第15-19页 |
| 2.1 实验动物 | 第15页 |
| 2.2 实验细胞 | 第15页 |
| 2.3 实验试剂 | 第15-16页 |
| 2.4 主要仪器 | 第16-17页 |
| 2.5 溶剂和试剂配制 | 第17-19页 |
| 3 实验方法 | 第19-28页 |
| 3.1 动物模型建立 | 第19页 |
| 3.2 原代肝脏巨噬细胞(KCs)提取分离 | 第19-20页 |
| 3.3 HE染色 | 第20页 |
| 3.4 Masson染色 | 第20-21页 |
| 3.5 免疫组织化学（IHC） | 第21页 |
| 3.6 免疫荧光染色（IF） | 第21-22页 |
| 3.7 细胞培养和处理 | 第22页 |
| 3.8 实时定量PCR（RT-qPCR） | 第22-24页 |
| 3.9 Western Blot（WB） | 第24-25页 |
| 3.10 细胞转染 | 第25-26页 |
| 3.11 酶联免疫吸附法 | 第26页 |
| 3.12 流式细胞术（FCM） | 第26-27页 |
| 3.13 统计 | 第27-28页 |
| 4 实验结果 | 第28-49页 |
| 4.1 CCl_4诱导小鼠肝纤维化进展及逆转模型的确立 | 第28-30页 |
| 4.2 小鼠肝脏纤维化进展及逆转过程中KCs极化分型的变化 | 第30-33页 |
| 4.3 小鼠肝脏纤维化进展及逆转过程中KCs中PTEN的表达变化 | 第33-35页 |
| 4.4 体外RAW264.7细胞不同极化表型时PTEN的表达变化 | 第35-38页 |
| 4.5 PTEN调控M2型巨噬细胞极化 | 第38-45页 |
| 4.6 PTEN通过PI3K/Akt/STAT6信号通路调控M2巨噬细胞极化 | 第45-49页 |
| 5 讨论 | 第49-52页 |
| 6 结论 | 第52-53页 |
| 参考文献 | 第53-57页 |
| 附录 | 第57-58页 |
| 致谢 | 第58-59页 |
| 综述 | 第59-71页 |
| 参考文献 | 第67-71页 |
