| 摘要 | 第1-4页 |
| ABSTRACT | 第4-7页 |
| 缩略语词表 | 第7-8页 |
| 第1章 前言 | 第8-10页 |
| 第2章 材料与方法 | 第10-19页 |
| ·主要试剂与仪器 | 第10-11页 |
| ·主要试剂 | 第10页 |
| ·主要仪器 | 第10-11页 |
| ·实验方法与步骤 | 第11-18页 |
| ·试剂的配制 | 第11-12页 |
| ·细胞培养 | 第12-13页 |
| ·细胞裂解及总RNA提取 | 第13页 |
| ·普通基因的逆转录反应 | 第13-14页 |
| ·microRNA-101的逆转录反应 | 第14页 |
| ·普通基因及GAPDH的RT-PCR反应 | 第14-15页 |
| ·miR-101及U6的RT-PCR检测 | 第15页 |
| ·microRNA-101及EZH2基因的荧光定量检测 | 第15-16页 |
| ·PC-3与LNCaP细胞的悬浮培养 | 第16-17页 |
| ·肿瘤细胞表面抗原分析及各细胞组成检测 | 第17页 |
| ·PC-3及LNCaP SFM培养细胞的流式细胞术分选 | 第17-18页 |
| ·分选后双阳性细胞miR-101、EZH2表达检测检测 | 第18页 |
| ·统计学处理 | 第18-19页 |
| 第3章 结果 | 第19-30页 |
| ·前列腺癌PC-3及LNCaP细胞的培养 | 第19-20页 |
| ·RT-PCR及荧光定量PCR检测 | 第20-22页 |
| ·RT-PCR及qRt-PCR逆转录聚合酶链反应 | 第20-21页 |
| ·miR-101在前列腺癌细胞株中的差异表达 | 第21-22页 |
| ·EZH2在前列腺癌细胞株中的表达差异 | 第22页 |
| ·PC-3、LNCaP细胞株可形成持续传代的微球囊 | 第22-25页 |
| ·PC-3微悬浮培养可富集肿瘤干细胞 | 第25-27页 |
| ·激素非依赖与激素依赖CSCs中EZH2的表达显著改变 | 第27-28页 |
| ·CSCs中EZH2的表达显著改变 | 第28-30页 |
| 第4章 讨论 | 第30-35页 |
| ·前列腺癌诊治现状 | 第30页 |
| ·癌干细胞理论及Pca CSCs在Pca的发生与发展中的意义 | 第30-31页 |
| ·悬浮培养富集前列腺癌干细胞 | 第31页 |
| ·EZH2基因在前列腺癌中特殊地位 | 第31-32页 |
| ·miR-101调控EZH2基因的可能机制分析 | 第32-35页 |
| 第5章 结论与展望 | 第35-36页 |
| ·结论 | 第35页 |
| ·后续研究方向 | 第35-36页 |
| 致谢 | 第36-37页 |
| 参考文献 | 第37-40页 |
| 攻读学位期间的研究成果 | 第40-41页 |
| 综述 | 第41-48页 |
| 参考文献 | 第46-48页 |
