| 中文摘要 | 第4-7页 |
| Abstract | 第7-9页 |
| 缩略语/符号说明 | 第13-15页 |
| 前言 | 第15-17页 |
| 研究现状、成果 | 第15-16页 |
| 研究目的、方法 | 第16-17页 |
| 一、膀胱癌组织中CADM1启动子甲基化状态和蛋白表达及其临床意义 | 第17-27页 |
| 1.1 对象和方法 | 第17-22页 |
| 1.1.1 组织标本 | 第17页 |
| 1.1.2 主要试剂 | 第17-18页 |
| 1.1.3 主要仪器 | 第18页 |
| 1.1.4 MSP检测CADM1基因启动子CpG岛甲基化状态 | 第18-20页 |
| 1.1.5 WB检测CADM1基因蛋白表达情况 | 第20-22页 |
| 1.1.6 统计分析 | 第22页 |
| 1.2 结果 | 第22-24页 |
| 1.2.1 CADM1基因甲基化状态及其与临床病理特征的关系 | 第22页 |
| 1.2.2 CADM1蛋白表达情况及其甲基化与蛋白表达量的关系 | 第22-24页 |
| 1.3 讨论 | 第24-26页 |
| 1.3.1 CADM1简介及功能概述 | 第24-25页 |
| 1.3.2 CADM1基因启动子甲基化状态和蛋白表达 | 第25-26页 |
| 1.4 小结 | 第26-27页 |
| 二、构建CADM1过表达和干扰T24细胞系 | 第27-52页 |
| 2.1 对象和方法 | 第27-37页 |
| 2.1.1 实验对象 | 第27页 |
| 2.1.2 主要试剂 | 第27页 |
| 2.1.3 主要仪器 | 第27-28页 |
| 2.1.4 细胞复苏 | 第28页 |
| 2.1.5 细胞常规培养 | 第28页 |
| 2.1.6 细胞传代 | 第28-29页 |
| 2.1.7 细胞冻存 | 第29页 |
| 2.1.8 CADM1过表达慢病毒载体构建并稳转T24细胞系 | 第29-34页 |
| 2.1.9 CADM1干扰慢病毒载体构建并稳转T24细胞系 | 第34-37页 |
| 2.1.10 WB检测 5-Aza-Cd R-T24细胞CADM1表达 | 第37页 |
| 2.1.11 统计分析 | 第37页 |
| 2.2 结果 | 第37-47页 |
| 2.2.1 稳定表达CADM1的T24构建及鉴定 | 第37-42页 |
| 2.2.2 稳定干扰CADM1的T24构建及鉴定 | 第42-46页 |
| 2.2.3 WB检测 5-Aza-Cd R-T24细胞CADM1表达表达情况 | 第46-47页 |
| 2.3 讨论 | 第47-50页 |
| 2.3.1 关于慢病毒载体 | 第47-50页 |
| 2.3.2 关于 5-Aza-Cd R | 第50页 |
| 2.4 小结 | 第50-52页 |
| 三、CADM1过表达和干扰T24细胞功能变化 | 第52-65页 |
| 3.1 对象和方法 | 第52-54页 |
| 3.1.1 研究对象 | 第52页 |
| 3.1.2 主要试剂 | 第52页 |
| 3.1.3 主要仪器 | 第52页 |
| 3.1.4 细胞培养和传代 | 第52页 |
| 3.1.5 蛋白测定 | 第52页 |
| 3.1.6 细胞增殖测定 | 第52-53页 |
| 3.1.7 体外侵袭实验 | 第53页 |
| 3.1.8 流式细胞仪测定细胞周期 | 第53-54页 |
| 3.1.9 统计分析 | 第54页 |
| 3.2 结果 | 第54-61页 |
| 3.2.1 WB测定相关蛋白表达 | 第54页 |
| 3.2.2 MTT法检测细胞增殖 | 第54页 |
| 3.2.3 体外侵袭实验 | 第54-58页 |
| 3.2.4 CADM1对细胞周期的影响 | 第58-61页 |
| 3.3 讨论 | 第61-64页 |
| 3.4 小结 | 第64-65页 |
| 结论 | 第65-66页 |
| 参考文献 | 第66-71页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第71-72页 |
| 附录 | 第72-75页 |
| 综述 | 第75-88页 |
| 参考文献 | 第83-88页 |
| 致谢 | 第88页 |
