| 中文提要 | 第1-6页 |
| Abstract | 第6-11页 |
| 引言 | 第11-21页 |
| 第一章 纳米粒的制备 | 第21-34页 |
| 试药与仪器 | 第21-22页 |
| 方法与结果 | 第22-33页 |
| 一、乳糖化去甲斑蝥素及N-乳糖酰壳聚糖的制备 | 第22-24页 |
| 1 乳糖化去甲斑蝥素的合成 | 第22-23页 |
| 2 N-乳糖酰壳聚糖的合成 | 第23-24页 |
| 二、纳米粒的制备及质量评价 | 第24-26页 |
| 1 去甲斑蝥素N-乳糖酰壳聚糖纳米粒的制备方法 | 第24页 |
| 2 纳米粒的质量评价 | 第24页 |
| 3. 含量测定 | 第24-26页 |
| 三、处方优化 | 第26-28页 |
| 1 单因素考察 | 第26-27页 |
| 2 正交优化 | 第27-28页 |
| 四、优化处方验证 | 第28-29页 |
| 五、纳米粒的表征 | 第29-33页 |
| 1 纳米粒形态观察 | 第29页 |
| 2 纳米粒的结构表征 | 第29-31页 |
| 3 纳米粒的体外释放 | 第31-33页 |
| 讨论与小结 | 第33-34页 |
| 第二章 小鼠体内的抗肿瘤活性 | 第34-40页 |
| 试药与仪器 | 第34-35页 |
| 方法与结果 | 第35-39页 |
| 一、抑瘤实验方法 | 第35-36页 |
| 二、纳米粒在荷瘤小鼠体内的抗肿瘤活性 | 第36-39页 |
| 1 荷瘤小鼠肿瘤生长曲线 | 第36页 |
| 2 抑瘤率 | 第36-37页 |
| 3 小鼠肿瘤的病理组织学观察 | 第37-39页 |
| 讨论与小结 | 第39-40页 |
| 第三章 肿瘤细胞摄入 | 第40-51页 |
| 材料与试药 | 第40-41页 |
| 方法与结果 | 第41-49页 |
| 一、LAC-NCTD 对肝肿瘤细胞的半数抑制率IC_(50) | 第41-43页 |
| 1 LAC-NCTD 对SMMC7721 细胞的IC_(50) | 第41-42页 |
| 2 LAC-NCTD 对HEPG2 细胞的IC_(50) | 第42-43页 |
| 二、肿瘤细胞对纳米粒的摄入 | 第43-49页 |
| 1 分析方法建立 | 第43-46页 |
| 2 细胞摄取实验 | 第46-49页 |
| 讨论与小结 | 第49-51页 |
| 第四章 大鼠肝微粒体中的代谢 | 第51-63页 |
| 仪器与试药 | 第51-52页 |
| 方法与结果 | 第52-62页 |
| 一、大鼠肝微粒体的制备 | 第52页 |
| 二、LOWRY 法测定肝微粒体蛋白浓度 | 第52-54页 |
| 1 检测波长的确定 | 第52页 |
| 2 溶液的配制 | 第52-53页 |
| 3 标准曲线 | 第53-54页 |
| 4 回收率与精密度 | 第54页 |
| 5 大鼠肝微粒体样品中蛋白浓度测定 | 第54页 |
| 三、体内含量测定方法的建立 | 第54-57页 |
| 1 色谱条件 | 第54页 |
| 2 标准溶液的配制 | 第54-55页 |
| 3 温孵条件 | 第55页 |
| 4 生物样品的处理方法 | 第55页 |
| 5 分析方法的专属性 | 第55-56页 |
| 6 标准曲线 | 第56页 |
| 7 回收率与精密度 | 第56-57页 |
| 四、大鼠肝微粒体中LAC-NCTD 代谢的酶动力学 | 第57-61页 |
| 1 温孵时间对LAC-NCTD 代谢的影响 | 第57-58页 |
| 2 肝微粒体蛋白浓度对LAC-NCTD 代谢的影响 | 第58-59页 |
| 3 底物浓度对LAC-NCTD 代谢的影响 | 第59-60页 |
| 4 酶促反应动力学参数 | 第60-61页 |
| 五、选择性CYP 酶抑制剂对LAC-NCTD 代谢的影响 | 第61-62页 |
| 讨论与小结 | 第62-63页 |
| 全文总结 | 第63-65页 |
| 参考文献 | 第65-72页 |
| 攻读硕士学位期间公开发表的论文 | 第72-73页 |
| 致谢 | 第73-74页 |
