| 摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 英文缩略词表 | 第7-11页 |
| 第一章 绪论 | 第11-19页 |
| 1.1 溃疡性结肠炎 | 第11-13页 |
| 1.1.1 溃疡性结肠炎简介 | 第11页 |
| 1.1.2 溃疡性结肠炎的发病原因 | 第11-13页 |
| 1.1.3 溃疡性结肠炎的治疗现状 | 第13页 |
| 1.2 溃疡性结肠炎相关机制研究 | 第13-15页 |
| 1.2.1 溃疡性结肠炎与巨噬细胞 | 第13页 |
| 1.2.2 溃疡性结肠炎与炎症因子 | 第13-14页 |
| 1.2.3 溃疡性结肠炎与炎症相关信号通路 | 第14-15页 |
| 1.3 猴头多糖的研究现状 | 第15-18页 |
| 1.3.1 猴头多糖简介 | 第15页 |
| 1.3.2 猴头多糖的提取和纯化方法 | 第15-16页 |
| 1.3.3 猴头多糖的结构 | 第16-17页 |
| 1.3.5 猴头多糖的药理活性 | 第17-18页 |
| 1.4 研究背景及意义 | 第18页 |
| 1.5 研究内容 | 第18-19页 |
| 第二章 猴头菌丝体多糖的分离、纯化及结构初步表征 | 第19-29页 |
| 2.1 实验材料 | 第19页 |
| 2.1.1 试剂及药品 | 第19页 |
| 2.1.2 实验仪器 | 第19页 |
| 2.2 实验方法 | 第19-21页 |
| 2.2.1 猴头粗多糖的提取 | 第19-20页 |
| 2.2.2 Sevage法除蛋白 | 第20页 |
| 2.2.3 总糖含量测定 | 第20页 |
| 2.2.4 蛋白质含量的测定 | 第20页 |
| 2.2.5 猴头粗多糖分子量和纯度的测定 | 第20页 |
| 2.2.6 DEAE-Sepharose Fast Flow离子交换柱色谱分离 | 第20页 |
| 2.2.7 Sephadex G-75葡聚糖凝胶柱色谱分离 | 第20-21页 |
| 2.2.8 分子量和纯度的测定 | 第21页 |
| 2.2.9 红外光谱(IR)测定 | 第21页 |
| 2.2.10 单糖组成测定 | 第21页 |
| 2.2.11 核磁共振谱(NMR)分析 | 第21页 |
| 2.3 统计学分析 | 第21页 |
| 2.4 实验结果与讨论 | 第21-27页 |
| 2.4.1 猴头粗多糖得率 | 第21页 |
| 2.4.2 猴头粗多糖中总糖含量 | 第21-22页 |
| 2.4.3 猴头粗多糖中蛋白含量 | 第22页 |
| 2.4.4 猴头粗多糖分子量分布 | 第22-23页 |
| 2.4.5 DEAE Sepharose Fast Flow离子交换柱色谱分离 | 第23页 |
| 2.4.6 Sephadex G-75葡聚糖凝胶柱色谱分离 | 第23-24页 |
| 2.4.7 HEP10分子量分布 | 第24页 |
| 2.4.8 HEP10单糖组成 | 第24-25页 |
| 2.4.9 HEP10红外光谱 | 第25-26页 |
| 2.4.10 HEP10核磁共振分析 | 第26-27页 |
| 2.5 本章小结 | 第27-29页 |
| 第三章 猴头多糖HEP10抗炎活性评价 | 第29-43页 |
| 3.1 实验材料 | 第29-30页 |
| 3.1.1 细胞株 | 第29页 |
| 3.1.2 实验试剂及药品 | 第29-30页 |
| 3.1.3 实验仪器 | 第30页 |
| 3.2 实验方法 | 第30-36页 |
| 3.2.1 巨噬细胞RAW264.7的培养及炎症细胞模型的建立 | 第30-31页 |
| 3.2.2 NO含量测定 | 第31-32页 |
| 3.2.3 MTT法测细胞活力 | 第32页 |
| 3.2.4 炎症相关基因转录水平的测定 | 第32-34页 |
| 3.2.5 蛋白免疫印迹法检测炎症相关信号通路、炎症蛋白和炎症小体的表达 | 第34-36页 |
| 3.3 统计学分析 | 第36页 |
| 3.4 实验结果分析 | 第36-40页 |
| 3.4.1 HEP10对RAW264.7细胞生长的影响 | 第36页 |
| 3.4.2 HEP10对LPS诱导的RAW264.7细胞NO分泌的影响 | 第36-37页 |
| 3.4.3 HEP10对LPS诱导RAW264.7细胞中炎症因子的影响 | 第37-38页 |
| 3.4.4 HEP10对LPS诱导RAW264.7细胞中炎症蛋白表达的影响 | 第38-39页 |
| 3.4.5 HEP10对LPS诱导RAW264.7细胞中炎症小体的影响 | 第39-40页 |
| 3.4.6 HEP10对LPS诱导RAW264.7细胞中信号通路的调控 | 第40页 |
| 3.5 本章小结 | 第40-43页 |
| 第四章 猴头多糖HEP10对小鼠结肠炎的影响及其机制研究 | 第43-57页 |
| 4.1 实验材料 | 第43页 |
| 4.1.1 实验动物 | 第43页 |
| 4.1.2 试剂及药品 | 第43页 |
| 4.1.3 实验仪器 | 第43页 |
| 4.2 实验方法 | 第43-45页 |
| 4.2.1 溃疡性结肠炎小鼠模型的建立和实验分组 | 第43-44页 |
| 4.2.2 小鼠结肠长度测定 | 第44页 |
| 4.2.3 小鼠疾病指数(DAI)评分 | 第44页 |
| 4.2.4 结肠组织病理切片及H&E染色 | 第44页 |
| 4.2.5 小鼠结肠组织中MPO、T-SOD和MDA的测定 | 第44-45页 |
| 4.2.6 小鼠血清中NO含量的测定 | 第45页 |
| 4.2.7 小鼠结肠组织中炎症因子TNF-α、IL-6 和IL-1β含量测定 | 第45页 |
| 4.2.8 小鼠结肠组织中炎症因子mRNA相对表达量的测定 | 第45页 |
| 4.2.9 蛋白免疫印迹法测定相关信号通路、炎症蛋白和炎症小体的表达 | 第45页 |
| 4.3 统计学分析 | 第45-46页 |
| 4.4 实验结果与分析 | 第46-53页 |
| 4.4.1 HEP10对结肠炎小鼠体重的影响 | 第46页 |
| 4.4.2 HEP10对结肠炎小鼠结肠形态、长度和质量长度比的影响 | 第46-47页 |
| 4.4.3 HEP10对结肠炎小鼠DAI评分的影响 | 第47-48页 |
| 4.4.4 小鼠结肠组织的病理学组织切片观察 | 第48页 |
| 4.4.5 HEP10对小鼠血清中NO和结肠中MDA、T-SOD、MPO含量的影响 | 第48-49页 |
| 4.4.6 HEP10对小鼠结肠中炎症因子的影响 | 第49-50页 |
| 4.4.7 HEP10对小鼠结肠中炎症蛋白的影响 | 第50-51页 |
| 4.4.8 HEP10对小鼠结肠中炎症小体的影响 | 第51-52页 |
| 4.4.9 HEP10对结肠炎小鼠结肠中相关信号通路的调控 | 第52-53页 |
| 4.5 本章小结 | 第53-57页 |
| 结论与展望 | 第57-59页 |
| 主要结论 | 第57页 |
| 问题与展望 | 第57-59页 |
| 致谢 | 第59-61页 |
| 参考文献 | 第61-67页 |
| 附录Ⅰ：作者在攻读硕士学位期间发表的论文 | 第67页 |
