| 摘要 | 第2-4页 |
| Abstract | 第4-5页 |
| 符号说明 | 第7-12页 |
| 第一章 前言 | 第12-40页 |
| 1.1 电化学生物传感器 | 第12-16页 |
| 1.1.1 电化学生物传感器概述 | 第12页 |
| 1.1.2 电化学生物传感器的原理 | 第12-15页 |
| 1.1.3 电化学生物传感器的应用 | 第15-16页 |
| 1.2 电化学生物界面的构筑 | 第16-20页 |
| 1.2.1 生物分子 | 第17-18页 |
| 1.2.2 构筑方法 | 第18-19页 |
| 1.2.3 载体材料 | 第19-20页 |
| 1.3 多孔聚合物材料 | 第20-23页 |
| 1.3.1 多孔聚合物材料的概述 | 第20-21页 |
| 1.3.2 多孔聚合物材料的制备方法 | 第21-23页 |
| 1.4 两亲嵌段共聚物 | 第23-28页 |
| 1.4.1 两亲嵌段共聚物的特性 | 第23-24页 |
| 1.4.2 两亲嵌段共聚物在多孔材料制备中的应用 | 第24-26页 |
| 1.4.3 两亲嵌段共聚物在固定蛋白分子中的应用 | 第26-27页 |
| 1.4.4 两亲嵌段共聚物亲疏水链段的选择 | 第27-28页 |
| 1.5 本论文选择的意义及研究内容 | 第28-30页 |
| 1.5.1 论文研究的意义 | 第28页 |
| 1.5.2 论文的研究内容 | 第28-30页 |
| 1.5.3 论文的创新点 | 第30页 |
| 1.6 参考文献 | 第30-40页 |
| 第二章 电荷-亲疏水双驱动自组装法制备多孔PS-b-PAA/Hb生物界面及其直接电化学行为的研究 | 第40-63页 |
| 2.1 引言 | 第40-41页 |
| 2.2 实验部分 | 第41-42页 |
| 2.2.1 试剂来源及准备 | 第41页 |
| 2.2.2 测定仪器 | 第41-42页 |
| 2.2.3 PS-b-PAA/Hb生物电极的制备 | 第42页 |
| 2.2.4 PS-b-PAA/Hb生物电极的响应及其表征 | 第42页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第42-59页 |
| 2.3.1 生物电极制备方案的选择及确定 | 第42-46页 |
| 2.3.1.1 不同方法制备的生物电极的电化学响应 | 第42-44页 |
| 2.3.1.2 不同方法制备的生物电极表面形态 | 第44-45页 |
| 2.3.1.3 生物电极制备方案的确定 | 第45-46页 |
| 2.3.2 PS-b-PAA/Hb生物界面膜的表征 | 第46-50页 |
| 2.3.2.1 外光谱 | 第46-47页 |
| 2.3.2.2 紫外光谱 | 第47-48页 |
| 2.3.2.3 接触角 | 第48-49页 |
| 2.3.2.4 X-射线光电子能谱 | 第49-50页 |
| 2.3.3 生物界面膜电极构筑优化 | 第50-53页 |
| 2.3.4 PS-b-PAA/Hb的电化学特性 | 第53-59页 |
| 2.3.4.1 PS-b-PAA/Hb的直接电化学 | 第53-54页 |
| 2.3.4.2 不同扫描速率下的循环伏安曲线 | 第54-55页 |
| 2.3.4.3 溶液pH值对直接电化学行为的影响 | 第55-56页 |
| 2.3.4.4 PS-b-PAA/Hb电极对H202的电催化特性 | 第56-58页 |
| 2.3.4.5 PS-b-PAA/Hb的重现性和稳定性 | 第58-59页 |
| 2.4 参考文献 | 第59-63页 |
| 第三章 PMMA-b-PAA多孔膜固定Hb及其直接电化学行为研究 | 第63-82页 |
| 3.1 引言 | 第63-64页 |
| 3.2 实验部分 | 第64-65页 |
| 3.2.1. 试剂来源 | 第64页 |
| 3.2.2 测定仪器 | 第64-65页 |
| 3.2.3 PMMA-b-PAA/Hb电极的制备 | 第65页 |
| 3.3 结果和讨论 | 第65-77页 |
| 3.3.1 几种不同方法制备的PMMA-b-PAA/Hb电极比较研究 | 第65-68页 |
| 3.3.2 PMMA-b-PAA/Hb膜的构筑优化 | 第68-70页 |
| 3.3.3 PS-b-PAA/Hb界面膜的表征 | 第70-72页 |
| 3.3.4 PMMA-b-PAA/Hb电极的直接电化学行为 | 第72-74页 |
| 3.3.5 PMMA-b-PAA/Hb电极对H_2O_2的电催化特性 | 第74-77页 |
| 3.3.6 PMMA-b-PAA/Hb的重现性和稳定性 | 第77页 |
| 3.4 参考文献 | 第77-82页 |
| 第四章 PS-b-P4VP/多酚氧化酶界面膜构筑及在酚类检测中的应用研究 | 第82-98页 |
| 4.1 引言 | 第82-83页 |
| 4.2 实验 | 第83-85页 |
| 4.2.1 试剂来源 | 第83页 |
| 4.2.2 测定仪器 | 第83-84页 |
| 4.2.3 PS-b-P4VP/PPO电极的制备 | 第84-85页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第85-94页 |
| 4.3.1 PS-b-P4VP/PPO生物膜制备方法的选择 | 第85-87页 |
| 4.3.2 PS-b-P4VP/PPO生物膜的表面性质 | 第87-88页 |
| 4.3.3 PS-b-P4VP/PPO生物界面膜构筑条件优化 | 第88-89页 |
| 4.3.4 PS-b-P4VP/PPO生物电极使用条件优化 | 第89-91页 |
| 4.3.5 PS-b-P4VP/PPO电极对儿茶酚的电催化活性 | 第91-93页 |
| 4.3.6 PS-b-P4VP/PPO电极对其它酚类的电催化活性 | 第93-94页 |
| 4.3.7 PS-b-P4VP/PPO电极的重复性和长期稳定性 | 第94页 |
| 4.4 参考文献 | 第94-98页 |
| 第五章 葡萄糖氧化酶在PMMA-b-PAA中的自组装固定及葡萄糖传感器 | 第98-112页 |
| 5.1 引言 | 第98页 |
| 5.2 实验部分 | 第98-101页 |
| 5.2.1 试剂来源 | 第98-99页 |
| 5.2.2 测定仪器 | 第99-100页 |
| 5.2.3 PMMA-b-PAA/GOD生物电极的制备 | 第100-101页 |
| 5.3 结果与讨论 | 第101-108页 |
| 5.3.1 PMMA-b-PAA/GOD膜制备方法的选择 | 第101-102页 |
| 5.3.2 PMMA-b-PAA/GOD膜的表征 | 第102-103页 |
| 5.3.3 电极构筑及使用条件优化 | 第103-106页 |
| 5.3.4 PMMA-b-PAA/GOD电极对葡萄糖电催化活性 | 第106-107页 |
| 5.3.5 PMMA-b-PAA/GOD电极的重复性和长期稳定性 | 第107-108页 |
| 5.4 参考文献 | 第108-112页 |
| 结论及展望 | 第112-115页 |
| 博士期间取得的成果 | 第115-116页 |
| 致谢 | 第116-117页 |
