| 摘要 | 第1-9页 |
| 英文摘要 | 第9-11页 |
| 英文缩略词 | 第11-12页 |
| 前言(INTRODUC TION) | 第12-13页 |
| 材料与方法(MATERIALS & METHODS) | 第13-23页 |
| 1. 材料 | 第13-15页 |
| ·细胞及质粒 | 第13页 |
| ·主要仪器设备 | 第13-14页 |
| ·主要试剂 | 第14-15页 |
| ·主要试剂的配制 | 第15页 |
| 2. 实验方法 | 第15-22页 |
| ·MIN6细胞培养，传代，冻存方法 | 第15-16页 |
| ·MIN6细胞通过真核细胞电穿孔的技术转染质粒的方法 | 第16页 |
| ·酶联免疫吸附法（ELISA）检测MIN6细胞内DAG含量 | 第16-18页 |
| ·ELISA法检测MIN6细胞内胰岛素的含量 | 第18-19页 |
| ·质粒扩增储备方法 | 第19-20页 |
| ·基于FRET荧光生物传感器的方法测定MIN6细胞中PKC含量的表达 | 第20-22页 |
| 3. 技术路线 | 第22页 |
| 4. 统计学方法 | 第22-23页 |
| 结果(RESULTS) | 第23-34页 |
| 1. MIN6细胞的一般形态 | 第23页 |
| 2．ELISA检测MIN6细胞上清液中DAG含量 | 第23-27页 |
| ·ELISA法测定细胞上清液中DAG含量的OD值 | 第23-24页 |
| ·根据ELISA法测得的O D值绘制标准曲线及标准方程 | 第24页 |
| ·各组之间MIN6细胞上清液中DAG浓度的比较 | 第24-27页 |
| 3 基于荧光生物传感器的FRET方法检测不同胰高血糖素浓度及不同葡萄糖浓度刺激下细胞内PKC的变化 | 第27-30页 |
| ·PKC质粒CKAR在MIN6细胞中的表达 | 第27页 |
| ·转染 PCDAN3.1 空质粒的 PKC 的变化 | 第27-28页 |
| ·无 Glu 浓度时不同 GC 浓度刺激下细胞内 PKC 的变化 | 第28页 |
| ·低浓度 Glu 时不同 GC 浓度刺激细胞内 PKC 的变化 | 第28-29页 |
| ·高浓度 Glu 浓度时不同 GC 浓度下细胞内 PKC 的变化 | 第29-30页 |
| ·不同浓度胰高血糖素在低糖和高糖下对 PKC 生成影响的比较 | 第30页 |
| 4 ELISA法检测MIN6细胞上清液中胰岛素含量 | 第30-34页 |
| ·实验分组 | 第30-31页 |
| ·ELISA法测定细胞上清液中胰岛素的O D值 | 第31页 |
| ·根据ELISA法测得的O D值绘制标准曲线及标准方程 | 第31页 |
| ·各组之间MIN6细胞上清液中胰岛素浓度的比较 | 第31-34页 |
| 讨论(DISCUSSION) | 第34-37页 |
| 结论(CONCLUSIONS) | 第37-38页 |
| 参考文献(REFERENCES) | 第38-40页 |
| 文献综述(REVIEW) | 第40-45页 |
| 参考文献 | 第43-45页 |
| 致谢 （Acknowledgements） | 第45-46页 |
| 作者简介 | 第46-47页 |
| 导师评阅表 | 第47页 |
