| 摘要 | 第1-6页 |
| Abstract | 第6-8页 |
| 缩略词表 | 第8-9页 |
| 前言 | 第9-12页 |
| 参考文献 | 第10-12页 |
| 第一部分 个体水平研究As_2O_3及miR-98在博来霉素诱导的大鼠肺纤维化发病中的作用 | 第12-28页 |
| 1 实验材料 | 第12-13页 |
| ·实验动物 | 第12页 |
| ·主要实验试剂 | 第12页 |
| ·主要仪器 | 第12-13页 |
| ·常用试剂配制 | 第13页 |
| 2 实验方法 | 第13-18页 |
| ·动物模型分组与模型制备 | 第13-14页 |
| ·动物模型取材 | 第14页 |
| ·石蜡切片制备 | 第14页 |
| ·HE染色 | 第14-15页 |
| ·Masson染色 | 第15页 |
| ·羟脯氨酸检测 | 第15页 |
| ·免疫组化 | 第15-16页 |
| ·组织RNA提取 | 第16页 |
| ·miR-98的加尾及反转录 | 第16页 |
| ·PCR反应 | 第16-17页 |
| ·Western blotting检测Jak-Stat3信号通路相关因子的表达变化 | 第17-18页 |
| 3 统计分析 | 第18页 |
| 4 实验结果 | 第18-26页 |
| ·HE染色观察大鼠肺组织形态改变 | 第18-19页 |
| ·Masson染色观察大鼠肺组织的胶原表达 | 第19-20页 |
| ·大鼠肺组织HYP含量检测 | 第20-21页 |
| ·免疫组织化学法检测大鼠肺组织内上皮标志性蛋白E-Cadherin的表达 | 第21-22页 |
| ·免疫组织化学法检测大鼠肺组织内间质标志性蛋白α-SMA的表达 | 第22-23页 |
| ·RT-qPCR检测各组大鼠肺组织miR-98的表达 | 第23-24页 |
| ·Western Blotting检测大鼠肺组织内Jak-Stat3信号通路及下游因子的表达 | 第24-26页 |
| 5 讨论 | 第26-27页 |
| 参考文献 | 第27-28页 |
| 第二部分 细胞水平验证As_2O_3纤维化的分子机制 | 第28-38页 |
| 1 实验材料 | 第28-29页 |
| ·细胞系 | 第28页 |
| ·主要试剂 | 第28页 |
| ·主要仪器 | 第28-29页 |
| ·常用试剂配制 | 第29页 |
| 2 实验方法 | 第29-30页 |
| ·A549细胞前期复苏、培养、传代及冻存 | 第29页 |
| ·microRNAs的化学合成 | 第29页 |
| ·细胞转染及加药实验 | 第29-30页 |
| ·免疫荧光实验 | 第30页 |
| 3 实验结果 | 第30-35页 |
| ·As_2O_3可以抑制TGF-β1诱导A549细胞的EMT | 第30-31页 |
| ·miR-98可以抑制TGF-β1诱导A549细胞的EMT | 第31-32页 |
| ·microRNAs转染及As_2O_3处理对A549细胞miR-98表达的影响 | 第32-33页 |
| ·Western Blotting检测miR-98对A549细胞Jak-Stat3信号通路及下游因子表达的影 | 第33-34页 |
| ·Western Blotting检测As_2O_3对A549细胞Jak-Stat3信号通路及下游因子表达的影 | 第34-35页 |
| 4 讨论 | 第35-36页 |
| 参考文献 | 第36-38页 |
| 文献综述 特发性肺纤维化发病的相关因子研究进展 | 第38-45页 |
| 1 细胞因子在IPF发病中的作用 | 第38-41页 |
| 2 气体分子与IPF | 第41页 |
| 3 miRNAs在IPF中的研究 | 第41-42页 |
| 4 总结 | 第42-43页 |
| 参考文献 | 第43-45页 |
| 致谢 | 第45页 |
| 研究生期间发表的文章 | 第45页 |
