摘要 | 第1-8页 |
ABSTRACT | 第8-14页 |
目录 | 第14-18页 |
前言 | 第18-21页 |
第一章 高渗盐水对原代小胶质细胞释放炎症因子的影响 | 第21-40页 |
1. 实验目的 | 第21页 |
2. 实验动物及材料 | 第21-24页 |
·实验动物 | 第21页 |
·实验材料 | 第21-23页 |
·试剂准备 | 第23-24页 |
3. 实验方法 | 第24-28页 |
·混合胶质细胞培养及小胶质细胞的获取 | 第24-25页 |
·细胞实验中最佳缺氧时间及最佳HS浓度的筛选 | 第25-27页 |
·免疫荧光实验检测小胶质细胞的纯度及炎症因子的表达 | 第27-28页 |
·ELISA检测HS对小胶质细胞释放炎症因子的影响 | 第28页 |
·统计方法 | 第28页 |
4. 实验结果 | 第28-37页 |
·原代混合胶质细胞培养 | 第28-29页 |
·纯化后小胶质细胞的鉴定 | 第29-30页 |
·各种浓度的HS、及不同缺氧时间对小胶质细胞释放炎症介质的影响 | 第30-33页 |
·100mM HS对小胶质细胞释放炎症介质的影响 | 第33-37页 |
5. 讨论 | 第37-39页 |
6. 结论 | 第39-40页 |
第二章 HS影响小胶质细胞释放炎症因子的机制 | 第40-53页 |
1. 实验目的 | 第40页 |
2. 实验动物及材料 | 第40-43页 |
·实验动物 | 第40页 |
·实验材料 | 第40-42页 |
·试剂准备 | 第42-43页 |
3. 实验方法 | 第43-47页 |
·探讨小胶质细胞释放炎症介质与p38及JNK信号通路的关系 | 第43-44页 |
·探讨HS对小胶质细胞中P-p38及P-JNK蛋白水平的影响 | 第44-46页 |
·统计方法 | 第46-47页 |
4. 实验结果 | 第47-50页 |
·缺氧后各组细胞释放炎症因子的情况 | 第47-49页 |
·缺氧条件下HS对p38及JNK磷酸化的影响 | 第49-50页 |
5. 讨论 | 第50-52页 |
6. 结论 | 第52-53页 |
第三章 炎症因子TNF-α及IL-1β对星形胶质细胞表达NKCC1的影响 | 第53-72页 |
1. 目的 | 第53页 |
2. 实验试剂与材料 | 第53-57页 |
·实验动物 | 第53页 |
·实验材料 | 第53-56页 |
·试剂准备 | 第56-57页 |
3. 实验方法 | 第57-63页 |
·星形胶质细胞的获取 | 第57-58页 |
·免疫荧光检测星形胶质细胞上NKCC1的表达及鉴定星形胶质细胞纯度 | 第58-59页 |
·western blot检测星形胶质细胞上NKCC1的表达 | 第59-61页 |
·RT real-time PCR | 第61-63页 |
·统计方法 | 第63页 |
4. 实验结果 | 第63-70页 |
·TNF-α、IL-1β星形胶质细胞上NKCC1 mRNA表达的影响 | 第63-64页 |
·TNF-α、IL-1β对星形胶质细胞上NKCC1蛋白表达的影响 | 第64-66页 |
·加入TNFR特异拮抗剂及IL-1R特异拮抗剂后TNF-α、IL-1β对星形胶质细胞上NKCC1 mRNA表达的影响 | 第66-67页 |
·加入TNFR特异拮抗剂及IL-1R特异拮抗剂后TNF-α、IL-1β对星形胶质细胞上NKCC1蛋白表达的影响 | 第67-70页 |
5. 讨论 | 第70-71页 |
6. 结论 | 第71-72页 |
第四章 HS对星形胶质细胞上NKCC1的直接影响 | 第72-87页 |
1. 目的 | 第72页 |
2. 实验试剂及材料 | 第72-76页 |
·实验动物 | 第72页 |
·实验材料 | 第72-75页 |
·试剂准备 | 第75-76页 |
3. 实验方法 | 第76-81页 |
·星形胶质细胞的纯化 | 第76页 |
·星形胶质细胞的分组 | 第76页 |
·免疫荧光检测星形胶质细胞上NKCC1的表达及鉴定星形胶质细胞纯度 | 第76-79页 |
·western blot检测星形胶质细胞上NKCC1的表达 | 第79-81页 |
·统计方法 | 第81页 |
4. 实验结果 | 第81-84页 |
·HS在缺氧条件下对星形胶质上NKCC1 mRNA表达的影响 | 第81-82页 |
·HS在缺氧条件下对星形胶质上NKCC1蛋白表达的影响 | 第82-84页 |
5. 讨论 | 第84-86页 |
6. 结论 | 第86-87页 |
全文总结 | 第87-88页 |
参考文献 | 第88-92页 |
攻读学位期间发表的论文 | 第92-93页 |
致谢 | 第93-95页 |
附件 | 第95页 |