| 摘要 | 第1-5页 |
| Abstract | 第5-9页 |
| 1 文献综述 | 第9-22页 |
| ·白藜芦醇的药理作用概述 | 第9-12页 |
| ·白藜芦醇的概述 | 第9页 |
| ·白藜芦醇在植物中分布 | 第9-10页 |
| ·白藜芦醇的药理作用 | 第10-12页 |
| ·CFTR 的概述 | 第12-20页 |
| ·CFTR 基因的发现 | 第12-13页 |
| ·CFTR 基因的结构与功能 | 第13页 |
| ·CFTR 氯离子通道的调节 | 第13-14页 |
| ·CFTR 在组织中的定位与功能 | 第14页 |
| ·CFTR 突变类型 | 第14-16页 |
| ·CFTR 与相关疾病 | 第16-18页 |
| ·CFTR 的分子药理学研究 | 第18-20页 |
| ·白藜芦醇对离子转运的激活作用 | 第20-21页 |
| ·本研究的目的 | 第21-22页 |
| 2 实验材料与方法 | 第22-26页 |
| ·实验材料 | 第22页 |
| ·细胞 | 第22页 |
| ·实验小鼠 | 第22页 |
| ·主要试剂 | 第22页 |
| ·设备 | 第22页 |
| ·实验方法 | 第22-26页 |
| ·CFTR 氯离子通道细胞荧光测定模型的建立及测定方法 | 第22-24页 |
| ·膜片钳技术对激活 CFTR 氯离子通道活性的测定方法 | 第24页 |
| ·Ussing Chamber 对 CFTR 氯离子通道功能的短路电流测定方法 | 第24页 |
| ·小鼠气管粘膜下腺液体分泌速度的光学测定方法 | 第24-25页 |
| ·大鼠结肠粘膜的短路电流测定方法 | 第25页 |
| ·细胞 cAMP 含量的测定 | 第25页 |
| ·数据统计分析 | 第25-26页 |
| 3 结果与分析 | 第26-39页 |
| ·白藜芦醇对野生型 CFTR 氯离子通道开放的激活作用 | 第26-27页 |
| ·白藜芦醇对激活 wt-CFTR 氯离子通道的特异性分析 | 第27-28页 |
| ·白藜芦醇对 wt-CFTR 氯离子通道激活作用的短路电流分析 | 第28-29页 |
| ·白藜芦醇对激活 wt-CFTR 氯离子通道的作用机制分析 | 第29-31页 |
| ·白藜芦醇对 F508 和 G551D 两种 CFTR 突变型的激活作用 | 第31-34页 |
| ·膜片钳技术记录白藜芦醇对激活 CFTR 氯离子通道活性的影响 | 第34-36页 |
| ·白藜芦醇对小鼠气管粘膜下腺液体分泌速度的分析 | 第36页 |
| ·白藜芦醇对大鼠结肠粘膜短路电流的测定 | 第36-39页 |
| 4 讨论 | 第39-41页 |
| ·白藜芦醇对野生型 CFTR 氯离子通道具有激活作用 | 第39页 |
| ·白藜芦醇对 F508-CFTR 和 G551D-CFTR 氯离子通道具有激活作用 | 第39-40页 |
| ·白藜芦醇是通过直接与 CFTR 相互作用激活氯离子通道活性 | 第40-41页 |
| 结论 | 第41-42页 |
| 本论文创新点 | 第42-43页 |
| 参考文献 | 第43-49页 |
| 攻读硕士学位期间发表学术论文情况 | 第49-50页 |
| 致谢 | 第50页 |
