| 摘要 | 第1-11页 |
| ABSTRACT | 第11-14页 |
| 第一章 文献综述 | 第14-22页 |
| 1 变形链球菌毒力因子及其诱发龋病的相关研究 | 第14-15页 |
| 2 天然产物防龋的研究进展 | 第15-17页 |
| 3 多酚与蛋白相互作用研究方法的介绍 | 第17-20页 |
| ·紫外-可见吸收光谱法 | 第17页 |
| ·荧光光谱法 | 第17-18页 |
| ·红外光谱法 | 第18页 |
| ·圆二色谱法 | 第18-19页 |
| ·高效液相色谱法 | 第19页 |
| ·核磁共振法 | 第19-20页 |
| ·毛细管电泳法 | 第20页 |
| 4 论文研究内容 | 第20-21页 |
| 5 创新点 | 第21-22页 |
| 第二章 高粱外种皮中低聚体原花青素的分离及鉴定 | 第22-39页 |
| 引言 | 第22-23页 |
| 1 材料与方法 | 第23-25页 |
| ·实验材料 | 第23-24页 |
| ·实验原料与试剂 | 第23页 |
| ·仪器设备 | 第23-24页 |
| ·实验方法 | 第24-25页 |
| ·高粱外种皮原花青素(SPC)的提取 | 第24页 |
| ·SPC粗提物的纯化 | 第24页 |
| ·SPC的ESI-MS分析 | 第24-25页 |
| ·SPC凝胶色谱分离 | 第25页 |
| ·SPC各级分的HPLC-MS/MS分析 | 第25页 |
| 2 结果与分析 | 第25-38页 |
| ·SPC的提取及纯化 | 第25页 |
| ·SPC的MS分析 | 第25-26页 |
| ·SPC凝胶色谱分离 | 第26-27页 |
| ·SPC各级分的HPLC-MS/MS分析 | 第27-38页 |
| ·SPC-Ⅰ的HPLC-MS/MS分析 | 第27-32页 |
| ·SPC-Ⅱ的HPLC-MS/MS分析 | 第32-35页 |
| ·SPC-Ⅲ的HPLC-MS/MS分析 | 第35-38页 |
| 3 结论 | 第38-39页 |
| 第三章 抑制 S.mutans Ingbritt(c)体外粘附高活性成分的筛选 | 第39-51页 |
| 引言 | 第39-40页 |
| 1 材料与方法 | 第40-44页 |
| ·实验材料 | 第40-41页 |
| ·实验原料与试剂 | 第40页 |
| ·仪器设备 | 第40-41页 |
| ·实验方法 | 第41-44页 |
| ·TSB培养基的配制 | 第41页 |
| ·标准菌夜的制备 | 第41页 |
| ·SPC-Ⅰ、SPC-Ⅱ和SPC-Ⅲ对S. mutans Ingbritt(c)在试管壁上粘附的抑制作用 | 第41页 |
| ·SPC-Ⅰ、SPC-Ⅱ和SPC-Ⅲ对S. mutans Ingbritt(c)IC_(50)的测定 | 第41-42页 |
| ·荧光检测SPC粗提物、SPC-Ⅰ、SPC-Ⅱ和SPC-Ⅲ对S.mutans Ingbritt(c)在SHA上粘附的影响 | 第42-44页 |
| ·统计分析 | 第44页 |
| 2 结果与讨论 | 第44-50页 |
| ·SPC-Ⅰ、SPC-Ⅱ和SPC-Ⅲ对S. mutans Ingbritt(c)在试管壁上粘附的抑制效果 | 第44页 |
| ·SPC-Ⅰ、SPC-Ⅱ和SPC-Ⅲ对S.mutans Ingbritt(c)IC_(50)的测定 | 第44-45页 |
| ·活性成分处理S. mutans Ingbritt(c)干预其在SHA上粘附的影响 | 第45-47页 |
| ·活性成分处理获得性膜干预S.mutans Ingbritt(c)在SHA上粘附的影响 | 第47-50页 |
| 3 结论 | 第50-51页 |
| 第四章 S.mutans Ingbritt(c)主要粘结素的制备 | 第51-66页 |
| 引言 | 第51-52页 |
| 1 材料与方法 | 第52-57页 |
| ·实验材料 | 第52-53页 |
| ·实验原料与试剂 | 第52-53页 |
| ·主要仪器设备 | 第53页 |
| ·实验方法 | 第53-57页 |
| ·培养基的配制及标准菌液的制备 | 第53页 |
| ·透析袋的前处理 | 第53-54页 |
| ·S.mutans Ingbritt(c)中GTFs的制备 | 第54页 |
| ·GTFs蛋白质含量的测定 | 第54-55页 |
| ·GTFs酶活的测定 | 第55-56页 |
| ·GTFs产多糖能力的测定 | 第56-57页 |
| ·SDS-PAGE及MALDI-TOF-MS分析 | 第57页 |
| 2 结果与讨论 | 第57-65页 |
| ·绘制蛋白质标准曲线 | 第57-58页 |
| ·绘制多糖标准曲线 | 第58页 |
| ·pI纯化GTFs粗提物 | 第58-59页 |
| ·pH范围：3.00～8.50 | 第58-59页 |
| ·pH范围：2.50～4.00 | 第59页 |
| ·pH范围：3.00～3.50 | 第59页 |
| ·GTFs的凝胶色谱纯化 | 第59-62页 |
| ·Initial粗蛋白凝胶分离结果及性质测定 | 第60页 |
| ·pH=3.10粗蛋白凝胶分离结果及性质测定 | 第60-61页 |
| ·pH=3.40粗蛋白凝胶分离结果及性质测定 | 第61-62页 |
| ·SDS-PAGE及MALDI-TOF-MS分析 | 第62-65页 |
| 3 结论 | 第65-66页 |
| 第五章 SPC-Ⅲ与类GTFS活性蛋白相互作用的研究 | 第66-83页 |
| 引言 | 第66页 |
| 1 材料与方法 | 第66-69页 |
| ·实验材料 | 第66-67页 |
| ·实验原料与试剂 | 第66-67页 |
| ·仪器设备 | 第67页 |
| ·实验方法 | 第67-69页 |
| ·SPC-Ⅲ与类GTFs活性蛋白(3.10、3.10-Ⅰ和3.10-Ⅱ)相互作用的紫外吸收光谱研究 | 第67-68页 |
| ·SPC-Ⅲ与类GTFs活性蛋白3.10-Ⅰ作用前后SDS-PAGE和MALDI-TOF-MS分析 | 第68页 |
| ·SPC-Ⅲ与类GTFs活性蛋白3.10-Ⅰ作用前后2-DE和MALDI-TOF-MS分析 | 第68-69页 |
| ·SPC-Ⅲ与类GTFs活性蛋白3.10-Ⅱ作用前后2-DE和MALDI-TOF-MS分析 | 第69页 |
| 2 结果与讨论 | 第69-82页 |
| ·SPC-Ⅲ与类GTFs活性蛋白相互作用的紫外吸收光谱 | 第69-71页 |
| ·SPC-Ⅲ与类GTFs活性蛋白3.10-Ⅰ作用前后的SDS-PAGE及MALDI-TOF-MS分析 | 第71-74页 |
| ·2-DE和MALDI-TOF-MS分析与SPC-Ⅲ作用前后的类GTFs活性蛋白3.10-Ⅰ | 第74-79页 |
| ·2-DE和MALDI-TOF-MS分析与SPC-Ⅲ作用前后的类GTFs活性蛋白3.10-Ⅱ | 第79-82页 |
| 3 结论 | 第82-83页 |
| 第六章 结论与展望 | 第83-85页 |
| 结论 | 第83-84页 |
| 展望 | 第84-85页 |
| 参考文献 | 第85-94页 |
| 致谢 | 第94页 |
