冷冻保护剂对神经干细胞球导入过程的研究
| 摘要 | 第1-6页 |
| Abstract | 第6-11页 |
| 引言 | 第11-12页 |
| 1 文献综述 | 第12-29页 |
| ·神经干细胞 | 第12-14页 |
| ·神经干细胞的概念 | 第12页 |
| ·神经干细胞的鉴定和培养方式 | 第12-14页 |
| ·神经干细胞的应用价值 | 第14页 |
| ·低温保存 | 第14-19页 |
| ·低温保存技术的发展 | 第14-15页 |
| ·低温伤害 | 第15-16页 |
| ·低温保存方法 | 第16-17页 |
| ·冷冻保护剂 | 第17-19页 |
| ·生物传质模型 | 第19-28页 |
| ·细胞传质模型 | 第19-22页 |
| ·组织传质模型 | 第22-25页 |
| ·果蔬脱水模型 | 第25-26页 |
| ·多组分传质模型 | 第26-27页 |
| ·其他模型 | 第27-28页 |
| ·建立保护剂对神经干细胞球导入模型的意义 | 第28页 |
| ·本文的研究思路 | 第28-29页 |
| 2 冷冻保护剂对神经干细胞球导入过程的模拟分析 | 第29-53页 |
| ·概述 | 第29页 |
| ·数学模型 | 第29-31页 |
| ·神经干细胞球模型结构 | 第29-30页 |
| ·传质方程 | 第30-31页 |
| ·初始条件和边界条件 | 第31页 |
| ·数学计算 | 第31-37页 |
| ·控制容积法 | 第31-34页 |
| ·求解思路 | 第34-36页 |
| ·程序设计 | 第36页 |
| ·模型验证 | 第36-37页 |
| ·结果和讨论 | 第37-52页 |
| ·小结 | 第52-53页 |
| 3 保护剂导入过程的影响因素分析和优化 | 第53-59页 |
| ·概述 | 第53页 |
| ·影响因素的筛选 | 第53-54页 |
| ·交数值试验方案设计 | 第54-55页 |
| ·结果与讨论 | 第55-58页 |
| ·小结 | 第58-59页 |
| 4 冷冻保护剂导入程序的优化 | 第59-71页 |
| ·概述 | 第59页 |
| ·分步导入模拟 | 第59-64页 |
| ·两步导入 | 第60-63页 |
| ·四步导入 | 第63-64页 |
| ·连续梯度导入模拟 | 第64-67页 |
| ·结果与讨论 | 第67-70页 |
| ·小结 | 第70-71页 |
| 5 保护剂导入神经干细胞传质过程的观测 | 第71-88页 |
| ·概述 | 第71页 |
| ·激光全息干涉系统 | 第71-74页 |
| ·激光全息干涉原理 | 第71-72页 |
| ·实时全息干涉条纹与折射率的关系 | 第72-74页 |
| ·神经干细胞的培养 | 第74-77页 |
| ·mNSCs原代培养 | 第74-75页 |
| ·mNSCs继代培养 | 第75-76页 |
| ·免疫荧光鉴定 | 第76-77页 |
| ·传质过程的观测 | 第77-81页 |
| ·醇在水中的扩散 | 第77-79页 |
| ·DMSO对mNSCs的导入 | 第79-81页 |
| ·结果与讨论 | 第81-87页 |
| ·mNSCs生长状态 | 第81页 |
| ·mNSCs特异性蛋白表达 | 第81-83页 |
| ·醇—水体系中乙醇浓度的分布 | 第83-85页 |
| ·微流控芯片内干涉条纹变化分析 | 第85-87页 |
| ·小结 | 第87-88页 |
| 结论 | 第88-89页 |
| 参考文献 | 第89-95页 |
| 附录A 英文词汇缩写表 | 第95-96页 |
| 附录B 主要缩写名称 | 第96-97页 |
| 附录C 程序基本内容 | 第97-99页 |
| 攻读硕士学位期间发表学术论文情况 | 第99-100页 |
| 致谢 | 第100-101页 |
