摘要 | 第1-5页 |
ABSTRACT | 第5-11页 |
第1章 引言 | 第11-13页 |
第2章 材料与仪器 | 第13-18页 |
·实验动物 | 第13页 |
·实验试剂 | 第13-16页 |
·主要购置试剂 | 第13-14页 |
·主要配置试剂 | 第14-16页 |
·实验仪器 | 第16-18页 |
第3章 实验方法 | 第18-26页 |
·实验分组 | 第18页 |
·兔体内二次蛛网膜下腔出血CVS 模型的建立 | 第18页 |
·选择性脑基底动脉造影及血管直径的测量 | 第18-19页 |
·HE 染色观察组织形态学的变化 | 第19-20页 |
·组织制备及HE 染色 | 第19-20页 |
·显微镜观察 | 第20页 |
·免疫共沉淀 | 第20-21页 |
·制备组织裂解物 | 第20页 |
·预纯化裂解物 | 第20-21页 |
·免疫沉淀 | 第21页 |
·Western blotting 技术检测Cx37 、Cx40、Cx43、Cx45 蛋白共沉淀后Cx37、Cx40、Cx43、Cx45 相互作用表达的变化 | 第21-25页 |
·总蛋白样品制备 | 第21页 |
·样品蛋白含量的测定 | 第21-22页 |
·配制5%积层胶及8%分离 | 第22页 |
·灌胶及上样 | 第22页 |
·垂直电泳 | 第22-23页 |
·转膜 | 第23页 |
·目标蛋白免疫反应 | 第23-24页 |
·目标蛋白化学发光及曝光 | 第24页 |
·膜再生 | 第24页 |
·其余三种缝隙连接蛋白及内参蛋白免疫反应 | 第24-25页 |
·其余三种缝隙连接蛋白及内参蛋白化学发光及曝光 | 第25页 |
·图像分析 | 第25页 |
·数据统计分析 | 第25-26页 |
第4章 实验结果 | 第26-31页 |
·CVS 模型的成功建立 | 第26页 |
·形态学观察 | 第26页 |
·脑血管造影 | 第26页 |
·Cx43 免疫共沉淀后Cx43、Cx37、Cx40、Cx45 蛋白表达的变化 | 第26-27页 |
·Cx45 免疫共沉淀后Cx43、Cx37、Cx40、Cx45 蛋白表达的变化 | 第27-28页 |
·Cx40 免疫共沉淀后 Cx40、Cx37、Cx43、Cx45 蛋白表达的变化 | 第28-29页 |
·Cx37 免疫共沉淀后 Cx37、Cx40、Cx43、Cx45 蛋白表达的变化 | 第29-31页 |
第5章 讨论 | 第31-37页 |
·SAH 后CVS 的研究现状 | 第31-32页 |
·缝隙连接 | 第32页 |
·GJ 通道类型及功能变化的相关研究 | 第32-33页 |
·GJ 通道类型变化在CVS 的作用机制探讨 | 第33-35页 |
·展望 | 第35-37页 |
第6章 结论 | 第37-38页 |
致谢 | 第38-39页 |
参考文献 | 第39-43页 |
附图 | 第43-50页 |
攻读学位期间的研究成果 | 第50-51页 |
附带综述 | 第51-57页 |