| 中文摘要 | 第1-4页 |
| Abstract | 第4-5页 |
| 縮略语表 | 第5-10页 |
| 第一章 前言 | 第10-19页 |
| ·宿主限制因子 | 第10-11页 |
| ·BST-2的结构特征 | 第11-12页 |
| ·BST-2的抗病毒机制 | 第12-14页 |
| ·Vpu的结构及其拮抗BST-2功能的机制 | 第14-17页 |
| ·Vpu的结构和功能 | 第14-15页 |
| ·Vpu的跨膜区和BST-2跨膜区相互作用诱导BST-2的泛素化降解 | 第15-16页 |
| ·Vpu拮抗BST-2的作用位点 | 第16-17页 |
| ·BST-2的其他拮抗因子 | 第17页 |
| ·结论 | 第17-19页 |
| 第二章 实验材料与方法 | 第19-27页 |
| ·实验材料 | 第19-21页 |
| ·细胞系 | 第19页 |
| ·化合物 | 第19页 |
| ·常用生化试剂 | 第19-20页 |
| ·试剂盒 | 第20页 |
| ·抗体 | 第20-21页 |
| ·质粒 | 第21页 |
| ·主要实验仪器 | 第21页 |
| ·实验方法 | 第21-27页 |
| ·质粒构建 | 第21-22页 |
| ·细胞培养及转染 | 第22页 |
| ·假型病毒产量及感染性测定 | 第22-23页 |
| ·Cell-ELISA流程 | 第23页 |
| ·免疫印迹(Western Blot) | 第23页 |
| ·FACS检测 | 第23-24页 |
| ·实时荧光定量PCR | 第24页 |
| ·高通量筛选流程及模型评价 | 第24-25页 |
| ·沉默BST-2的单克隆Hela细胞系的建立 | 第25页 |
| ·化合物IMB-LA抗病毒活性测定 | 第25页 |
| ·BRET比值测定 | 第25页 |
| ·免疫共沉淀(Co-IP) | 第25-26页 |
| ·激光共聚焦(Confocal Microscopy) | 第26-27页 |
| 第三章 实验结果 | 第27-42页 |
| ·液体工作站用epMotion5070于Vpu下调BST2筛药模型的高通量筛选以及模型评价 | 第27-30页 |
| ·Cell-ELISA用于检测细胞表面BST-2的表达水平流程 | 第27-28页 |
| ·液体工作站epMotion5070应用于Cell-ELISA模型的特异性分析 | 第28页 |
| ·模型评价结果 | 第28-29页 |
| ·初筛结果和复筛结果 | 第29-30页 |
| ·IMB-LA上调细胞表面BST-2含量的机制研究 | 第30-38页 |
| ·IMB-LA可以上调Hela细胞表面BST-2含量在有Vpu存在的情况下 | 第30-32页 |
| ·IMB-LA不影响细胞bst-2 mRNA转录及Vpu的表达 | 第32-33页 |
| ·IMB-LA特异性阻断Vpu降解BST-2 | 第33-35页 |
| ·IMB-LA对于BST-2/Vpu/β-TrCP2相互作用的影响 | 第35-36页 |
| ·IMB-LA对于Vpu促进的BST-2泛素化的影响 | 第36-37页 |
| ·IMB-LA对于Vpu诱导的BST-2降解转运的影响 | 第37-38页 |
| ·IMB-LA的抗病毒活性的研究 | 第38-42页 |
| ·Hela-shRNACDS细胞系的建立 | 第38-39页 |
| ·IMB-LA的抗病毒活性依赖于BST-2 | 第39-42页 |
| 第四章 讨论 | 第42-44页 |
| 第五章 结论 | 第44-45页 |
| 参考文献 | 第45-49页 |
| 硕士期间发表论文 | 第49-50页 |
| 一.发表论文 | 第49页 |
| 二.申请专利 | 第49-50页 |
| 致谢 | 第50页 |
