| 0 前言 | 第1-45页 |
| 0．1 AFLP分子标记技术的研究进展 | 第8-17页 |
| 0．1．1 AFLP的基本原理 | 第9-11页 |
| 0．1．2 AFLP的技术特点 | 第11-12页 |
| 0．1．3 影响实验成败的关键因素 | 第12-13页 |
| 0．1．4 AFLP的应用前景 | 第13-17页 |
| 0．2 本研究的目的、意义 | 第17-45页 |
| 1 材料与方法 | 第18-27页 |
| 1．1 实验材料 | 第18页 |
| 1．2 基因组DNA的提取 | 第18-19页 |
| 1．3 AFLP分析 | 第19-21页 |
| 1．3．1 AFLP分析方法 | 第19-20页 |
| 1．3．2 聚丙烯酰胺凝胶电泳 | 第20页 |
| 1．3．3 银染显色 | 第20-21页 |
| 1．4 凝胶上回收多态性DNA片段 | 第21-22页 |
| 1．4．1 聚丙烯酰胺凝胶上回收DNA片段 | 第21页 |
| 1．4．2 琼脂糖凝胶上回收DNA片段 | 第21-22页 |
| 1．5 目的片段的克隆、测序 | 第22-24页 |
| 1．5．1 试剂准备 | 第22页 |
| 1．5．2 受体菌培养 | 第22页 |
| 1．5．3 大肠杆菌DH5α感受态细胞的制备 | 第22-23页 |
| 1．5．4 片段DNA与T-载体的连接 | 第23页 |
| 1．5．5 质粒的转化 | 第23页 |
| 1．5．6 质粒抽提（碱法） | 第23-24页 |
| 1．5．7 质粒的检测 | 第24页 |
| 1．6 Southern印迹分析 | 第24-26页 |
| 1．6．1 转膜 | 第24-25页 |
| 1．6．2 探针标记 | 第25页 |
| 1．6．3 探针纯化 | 第25页 |
| 1．6．4 杂交 | 第25-26页 |
| 1．7 标记的SCAR转化 | 第26页 |
| 1．8 蛋白质SDS-PAGE电泳 | 第26-27页 |
| 2 结果与分析 | 第27-41页 |
| 2．1 芜菁与白菜型油菜及其F_2代性状观察 | 第27-29页 |
| 2．2 DNA的提取与检测 | 第29页 |
| 2．3 AFLP标记分析 | 第29-34页 |
| 2．3．1 引物的筛选 | 第29-31页 |
| 2．3．2 AFLP分子标记的高效性 | 第31-33页 |
| 2．3．3 差异带的单株及亲本验证 | 第33-34页 |
| 2．4 Bassam法银染显色的比较分析 | 第34-36页 |
| 2．5 EM220差异条带的Southern印迹分析 | 第36-37页 |
| 2．6 EM220差异条带的克隆、测序 | 第37-38页 |
| 2．7 AFLP标记转化为SCAR标记分析 | 第38-40页 |
| 2．8 蛋白质SDS-PAGE分析 | 第40-41页 |
| 3 讨论 | 第41-45页 |
| 3．1 AFLP分子标记技术的高效性 | 第41页 |
| 3．2 AFLP特异片段的回收克隆和SCAR转化 | 第41-43页 |
| 3．3 直根膨大性状的遗传效应分析 | 第43-45页 |
| 参考文献 | 第45-50页 |
| 英文摘要 | 第50页 |