| 摘要 | 第1-12页 |
| Abstract | 第12-15页 |
| 第1章 脊椎动物鱼类生殖细胞分子标记研究概况 | 第15-33页 |
| ·鱼类的性别决定 | 第15-16页 |
| ·鱼类的性别分化 | 第16-17页 |
| ·类固醇激素对鱼类的性分化的作用 | 第17页 |
| ·外源性类固醇激素对鱼类的性分化的作用 | 第17-18页 |
| ·内源性类固醇激素和鱼类性分化的关系 | 第18-19页 |
| ·鱼类生殖细胞分化的研究 | 第19-20页 |
| ·鱼类原始生殖细胞(PGCs)的特征 | 第20-21页 |
| ·鱼类原始生殖细胞(PGCs)的起源、迁移和分化 | 第21-29页 |
| ·鱼类原始生殖细胞的起源 | 第21-22页 |
| ·鱼类原始生殖细胞的迁移 | 第22-23页 |
| ·鱼类原始生殖细胞及性腺的分化 | 第23-25页 |
| ·PGCs发生和发育的有关基因及分子特征 | 第25-29页 |
| ·生殖细胞的发生和分子标记 | 第29-30页 |
| ·生殖细胞的特异性标记 | 第29-30页 |
| ·本项目的立项依据 | 第30-33页 |
| 第2章 南方鲇Vasa两种亚型cDNA的克隆及其表达研究 | 第33-45页 |
| ·前言 | 第33页 |
| ·材料和方法 | 第33-36页 |
| ·材料和试剂 | 第33-34页 |
| ·基因克隆 | 第34页 |
| ·南方鲇Vasa部分基因组序列的确定 | 第34页 |
| ·scVasa和scVasa-s序列分析与Vasa进化树的构建 | 第34-35页 |
| ·南方鲇Vasa两个亚型mRNA在各组织中的分布 | 第35页 |
| ·原位杂交 | 第35-36页 |
| ·两个亚型mRNA在不同时期卵巢的表达 | 第36页 |
| ·结果 | 第36-41页 |
| ·南方鲇scVasa和scVasa-s序列 | 第36-38页 |
| ·南方鲇Vasa部分基因组序列 | 第38页 |
| ·南方鲇scVasa和scVasa-s序列分析和进化树分析 | 第38-39页 |
| ·南方鲇scVasa和scVasa-s mRNA的组织表达模式 | 第39-40页 |
| ·原位杂交 | 第40页 |
| ·南方鲇scVasa和scVasa-s mRNA在VS和ORS卵巢中的表达变化 | 第40-41页 |
| ·讨论 | 第41-45页 |
| ·南方鲇scVasa和scVasa-s序列分析 | 第41-42页 |
| ·南方鲇Vasa两个亚型的组织分布 | 第42页 |
| ·南方鲇性腺中scVasa表达的细胞类型 | 第42-43页 |
| ·南方鲇scVasa和scVasa-s在卵黄生成期(VS)和卵巢恢复期(ORS)的表达变化 | 第43-45页 |
| 第3章 尼罗罗非鱼Scp3基因的克隆和表达分析 | 第45-61页 |
| ·前言 | 第45-48页 |
| ·材料和方法 | 第48-51页 |
| ·实验动物 | 第48页 |
| ·菌株、克隆载体、工具酶 | 第48页 |
| ·罗非鱼Scp3基因的克隆 | 第48-49页 |
| ·Scp3序列分析与Scp3进化树的构建 | 第49-50页 |
| ·罗非鱼Scp3 mRNA在各组织中的分布 | 第50页 |
| ·罗非鱼Scp3 mRNA在罗非鱼性腺个体发生中的表达 | 第50页 |
| ·原位杂交(in situ hybridization,ISH)检测Scp3表达情况 | 第50-51页 |
| ·原位杂交分析罗非鱼Scp3 mRNA在性腺个体发生中的表达 | 第51页 |
| ·结果 | 第51-56页 |
| ·罗非鱼Scp3序列 | 第51-52页 |
| ·罗非鱼Scp3序列分析和进化树分析 | 第52-53页 |
| ·罗非鱼Scp3 mRNA的组织表达模式 | 第53-54页 |
| ·RT-PCR分析罗非鱼Scp3 mRNA的个体发生 | 第54页 |
| ·原位杂交分析罗非鱼Scp3 mRNA的个体发生 | 第54-55页 |
| ·原位杂交分析罗非鱼Scp3 mRNA药物处理性逆转性腺中的表达 | 第55-56页 |
| ·讨论 | 第56-61页 |
| ·罗非鱼Scp3序列及系统分析 | 第56-57页 |
| ·罗非鱼Scp3的组织表达模式 | 第57-58页 |
| ·RT-PCR和原位杂交对罗非鱼Scp3的系统发生分析 | 第58页 |
| ·原位杂交研究Scp3在性逆转鱼性腺中的表达 | 第58-61页 |
| 第4章 尼罗罗非鱼Figla基因的克隆和表达分析 | 第61-75页 |
| ·前言 | 第61-63页 |
| ·Figla研究现状 | 第61页 |
| ·Figla基因结构 | 第61页 |
| ·Figla蛋白结构 | 第61页 |
| ·Figla基因功能 | 第61-63页 |
| ·材料和方法 | 第63-68页 |
| ·实验动物 | 第63页 |
| ·菌株、克隆载体、工具酶 | 第63页 |
| ·Figla cDNA的分子克隆 | 第63-66页 |
| ·Figla在尼罗罗非鱼各组织中的表达分布 | 第66-67页 |
| ·系统进化树分析 | 第67页 |
| ·通过RT-PCR分析Figla表达 | 第67页 |
| ·原位杂交 | 第67-68页 |
| ·结果 | 第68-72页 |
| ·尼罗罗非鱼Figla序列分析 | 第68-69页 |
| ·系统发生分析 | 第69-70页 |
| ·尼罗罗非鱼Figla组织分布 | 第70-71页 |
| ·RT-PCR检测尼罗罗非鱼发育过程中Figla的表达情况 | 第71页 |
| ·实时定量RT-PCR检测个体发生过程中Figla的表达情况 | 第71-72页 |
| ·原位杂交 in situ hvbridization | 第72页 |
| ·讨论 | 第72-75页 |
| ·所测出序列为尼罗罗非鱼Figla序列 | 第72页 |
| ·Figla可用于卵母细胞特异标记 | 第72-73页 |
| ·研究Figla的意义 | 第73-75页 |
| 第5章 尼罗罗非鱼Oct-4基因的克隆和表达分析 | 第75-87页 |
| ·前言 | 第75-77页 |
| ·Oct4基因结构和定位 | 第75页 |
| ·Oct4基因的功能 | 第75-76页 |
| ·Oct4基因的调控和相互作用 | 第76-77页 |
| ·材料和方法 | 第77-80页 |
| ·实验动物 | 第77页 |
| ·菌株、克隆载体、工具酶 | 第77页 |
| ·罗非鱼Oct4基因的克隆 | 第77-78页 |
| ·Oct4序列分析与Oct4进化树的构建 | 第78页 |
| ·罗非鱼Oct4在雌雄成鱼的组织表达模式的研究 | 第78-79页 |
| ·原位杂交(in situ hybridization,ISH) | 第79-80页 |
| ·实验结果 | 第80-83页 |
| ·尼罗罗非鱼Oct4 cDNA和氨基酸全序列 | 第80-81页 |
| ·序列分析和进化树的构建 | 第81-82页 |
| ·罗非鱼Oct4 mRNA的组织表达模式 | 第82页 |
| ·个体发生和药物处理性逆转过程中的Oct4 mRNA原位杂交检测 | 第82-83页 |
| ·讨论 | 第83-87页 |
| ·罗非鱼Oct4序列及其系统发生分析 | 第83-84页 |
| ·Oct4的组织表达模式 | 第84页 |
| ·原位杂交分析Oct4在雌雄性腺发育过程中的表达 | 第84-87页 |
| 第6章 尼罗罗非鱼Spo11基因的克隆和表达分析 | 第87-99页 |
| ·前言 | 第87-89页 |
| ·基因克隆 | 第87页 |
| ·基因表达 | 第87页 |
| ·基因功能 | 第87-88页 |
| ·基因定位 | 第88页 |
| ·动物模型 | 第88页 |
| ·研究意义 | 第88-89页 |
| ·材料和方法 | 第89-92页 |
| ·实验动物 | 第89页 |
| ·菌株、克隆载体、工具酶 | 第89页 |
| ·罗非鱼Spo11基因的克隆 | 第89-90页 |
| ·Spo11序列分析与Spo11进化树的构建 | 第90-91页 |
| ·Spo11组织分布 | 第91页 |
| ·原位杂交(in situ hybridization,ISH) | 第91-92页 |
| ·结果 | 第92-97页 |
| ·罗非鱼Spo11序列 | 第92页 |
| ·罗非鱼Spo11序列分析和进化树分析 | 第92-94页 |
| ·罗非鱼Spo11 mRNA的组织表达模式 | 第94-95页 |
| ·原位杂交分析罗非鱼Spo11 mRNA的个体发生 | 第95页 |
| ·原位杂交分析罗非鱼Spo11 mRNA药物处理性逆转性腺中的表达 | 第95-96页 |
| ·实时定量RT-PCR检测个体发生过程中Spo11的表达情况 | 第96-97页 |
| ·讨论 | 第97-99页 |
| ·所测出序列为尼罗罗非鱼Spo11序列 | 第97页 |
| ·Spo11可用于处于减数分裂的生殖细胞的特异标记 | 第97-98页 |
| ·Spo11在性逆转鱼性腺中的表达 | 第98-99页 |
| 结论 | 第99-101页 |
| 参考文献 | 第101-117页 |
| 主要的实验方法 | 第117-129页 |
| 致谢 | 第129-131页 |
| 在学期间所发表的文章和参加科研情况 | 第131页 |
