| 摘要 | 第1-5页 |
| Abstract | 第5-14页 |
| 前言 | 第14-15页 |
| 1 增强 UV-B 辐射对植物的影响 | 第15-19页 |
| ·增强 UV-B 辐射对植物生长发育的影响 | 第15页 |
| ·增强 UV-B 辐射对植物体内生物大分子的影响 | 第15-17页 |
| ·增强 UV-B 辐射对植物 DNA 的影响 | 第15-16页 |
| ·增强 UV-B 辐射对植物氨基酸和蛋白质的影响 | 第16-17页 |
| ·增强 UV-B 辐射对植物生理代谢的影响 | 第17-19页 |
| ·增强 UV-B 辐射对植物光合作用的影响 | 第17-18页 |
| ·增强 UV-B 辐射对紫外吸收物质合成的影响 | 第18-19页 |
| ·增强 UV-B 辐射对植物抗氧化系统的影响 | 第19页 |
| 2 激光对植物的生物学效应 | 第19-22页 |
| ·激光及激光器的种类 | 第20页 |
| ·激光生物学效应机制 | 第20-21页 |
| ·激光生物热效应 | 第21页 |
| ·激光光化效应 | 第21页 |
| ·激光机械效应 | 第21页 |
| ·激光电磁效应 | 第21页 |
| ·激光对植物的影响 | 第21-22页 |
| ·激光对植物生长发育的影响 | 第21-22页 |
| ·激光对植物生理、生化代谢的影响 | 第22页 |
| ·激光对植物抗逆性的影响 | 第22页 |
| 3 植物细胞凋亡的研究进展 | 第22-27页 |
| ·动植物细胞凋亡的区别 | 第22-23页 |
| ·植物细胞凋亡在植物生长发育中的作用 | 第23页 |
| ·植物细胞凋亡与生物或非生物胁迫 | 第23页 |
| ·植物细胞凋亡相关的蛋白酶调控 | 第23-24页 |
| ·植物细胞凋亡相关的信号分子 | 第24-25页 |
| ·植物细胞凋亡的相关细胞器 | 第25-27页 |
| ·线粒体和细胞色素 c 与植物细胞凋亡 | 第25-27页 |
| ·叶绿体与植物细胞凋亡 | 第27页 |
| ·其它细胞器与植物细胞凋亡 | 第27页 |
| 4 本研究的主要目的及主要内容 | 第27-28页 |
| 第一章 增强 UV-B 辐射与 He-Ne 激光辐照对小麦细胞凋亡的影响 | 第28-38页 |
| 1 材料培养与处理 | 第28-29页 |
| ·材料培养 | 第28页 |
| ·处理设置 | 第28-29页 |
| ·UV-B 辐射处理 | 第28页 |
| ·He-Ne 激光辐射处理 | 第28-29页 |
| 2 方法 | 第29-30页 |
| ·适合流式细胞仪分析的小麦细胞核提取方法 | 第29-30页 |
| ·不同细胞核提取缓冲液 | 第29页 |
| ·方法 | 第29-30页 |
| ·不同处理组小麦幼苗根细胞凋亡检测 | 第30页 |
| ·细胞凋亡形态观察 | 第30页 |
| ·流式细胞仪分析 | 第30页 |
| 3 结果与分析 | 第30-36页 |
| ·适合流式细胞仪分析的小麦细胞核提取方法 | 第30-33页 |
| ·小麦幼苗细胞核提取方法比较 | 第30-32页 |
| ·小麦幼苗细胞核的流式细胞仪分析 | 第32-33页 |
| ·不同处理组小麦细胞凋亡检测 | 第33-36页 |
| ·增强 UV-B 辐射对小麦幼苗根细胞凋亡的诱导 | 第33-34页 |
| ·He-Ne 激光和增强 UV-B 辐射对小麦幼苗根细胞凋亡的流式细胞仪分析 | 第34-36页 |
| 4 讨论 | 第36-38页 |
| ·适合流式细胞仪分析的小麦细胞核提取方法 | 第36-37页 |
| ·不同处理组小麦细胞凋亡检测 | 第37-38页 |
| 第二章 增强 UV-B 辐射与 He-Ne 激光辐照对小麦细胞凋亡相关信号通路物质分子的影响 | 第38-44页 |
| 1 材料培养与处理 | 第38页 |
| 2 方法 | 第38-39页 |
| ·O_2产生速率测定 | 第38-39页 |
| ·标准曲线的制备 | 第38页 |
| ·O_2含量测定 | 第38-39页 |
| ·H_2O_2含量测定 | 第39页 |
| ·线粒体指标测定 | 第39页 |
| ·线粒体的提取与分离 | 第39页 |
| ·线粒体膜通透性检测 | 第39页 |
| ·线粒体细胞色素 c/a 测定 | 第39页 |
| 3 结果与分析 | 第39-42页 |
| ·增强 UV-B 辐射与 He-Ne 激光辐照对小麦活性氧代谢的影响 | 第39-41页 |
| ·不同处理对小麦幼苗根 O_2含量的影响 | 第39-40页 |
| ·不同处理对小麦幼苗根 H_2O2含量的影响 | 第40-41页 |
| ·增强 UV-B 辐射与 He-Ne 激光辐照对小麦细胞色素 c 代谢的影响 | 第41-42页 |
| ·不同处理组对小麦幼苗根线粒体膜通透性的影响 | 第41-42页 |
| ·不同处理组对小麦幼苗根线粒体细胞色素 c 含量的影响 | 第42页 |
| 4 讨论 | 第42-44页 |
| 第三章 增强 UV-B 辐射与 He-Ne 激光辐照对小麦抗氧化系统的影响 | 第44-54页 |
| 1 材料培养与处理 | 第44页 |
| 2 方法 | 第44-46页 |
| ·抗氧化酶类 POD、CAT、SOD 活性及同工酶测定 | 第44-45页 |
| ·过氧化物酶（POD）活性测定 | 第44页 |
| ·过氧化氢酶（CAT）活性测定 | 第44页 |
| ·超氧化物歧化酶（SOD）活性测定 | 第44-45页 |
| ·POD、CAT、SOD 同工酶电泳及染色 | 第45页 |
| ·抗氧化物 GSH 和 AsA 含量测定 | 第45-46页 |
| ·GSH 含量测定 | 第45页 |
| ·ASA 含量的测定 | 第45-46页 |
| 3 结果与分析 | 第46-52页 |
| ·增强 UV-B 辐射与 He-Ne 激光辐照对小麦 POD、CAT、SOD 活性的影响 | 第46-47页 |
| ·增强 UV-B 辐射与 He-Ne 激光辐照对小麦 POD、CAT、SOD 同工酶的影响 | 第47-51页 |
| ·增强 UV-B 辐射与 He-Ne 激光辐照对小麦抗氧化物 GSH、AsA 含量的影响 | 第51-52页 |
| 4 讨论 | 第52-54页 |
| 结论 | 第54-56页 |
| 致谢 | 第56-58页 |
| 参考文献 | 第58-78页 |
| 附录 | 第78页 |
