摘要 | 第1-4页 |
Abstract | 第4-9页 |
第一章 文献综述 | 第9-16页 |
1 诱导抗病性及诱抗剂的种类 | 第9-10页 |
·诱导抗病性 | 第9页 |
·植物抗病诱导剂的种类 | 第9-10页 |
·非生物源诱抗剂 | 第9页 |
·生物源诱抗剂 | 第9-10页 |
2 寡糖激发子概述 | 第10-15页 |
·寡糖激发子 | 第10页 |
·寡糖激发子的特点 | 第10-11页 |
·寡糖激发子的作用机理 | 第11-15页 |
·组织病理学机制 | 第11-12页 |
·生理生化机制 | 第12-13页 |
·寡糖激发子信号传递过程 | 第13-15页 |
3 研究目的与意义 | 第15-16页 |
第二章 寡糖诱导向日葵抗锈病最佳浓度及时间筛选 | 第16-20页 |
1 材料与方法 | 第16-17页 |
·材料 | 第16页 |
·供试病原菌 | 第16页 |
·夏孢子悬浮液的配制 | 第16页 |
·接种方法 | 第16页 |
·试验设计 | 第16-17页 |
·不同浓度寡糖液对向日葵抗锈病的影响 | 第16页 |
·最佳稀释浓度寡糖对向日葵抗病性的诱导 | 第16-17页 |
·向日葵反应型分级标准 | 第17页 |
·病情指数与防效计算 | 第17页 |
2 结果与分析 | 第17-18页 |
·寡糖诱导向日葵抗锈病最佳浓度的筛选 | 第17-18页 |
·寡糖诱导向日葵抗锈病最佳时间的筛选 | 第18页 |
3 讨论 | 第18-20页 |
第三章 寡糖对向日葵防御酶系的影响 | 第20-24页 |
1 材料与方法 | 第20-21页 |
·试验材料 | 第20页 |
·采样方法 | 第20页 |
·酶活性测定 | 第20-21页 |
·PAL 活性测定 | 第20页 |
·POD、PPO、CAT 活性测定 | 第20-21页 |
2 结果分析 | 第21-23页 |
·不同浓度寡糖处理对向日葵叶片PAL 活性的影响 | 第21页 |
·不同浓度寡糖处理对向日葵叶片PPO 活性的影响 | 第21-22页 |
·不同浓度寡糖处理对向日葵叶片POD 活性的影响 | 第22页 |
·不同浓度寡糖处理对向日葵叶片CAT 活性的影响 | 第22-23页 |
3 讨论 | 第23-24页 |
第四章 寡糖对向日葵叶片细胞病程相关蛋白及细胞壁物质的诱导作用 | 第24-30页 |
1 材料与方法 | 第24-26页 |
·供试材料 | 第24页 |
·供试病原菌 | 第24页 |
·试验设计 | 第24-25页 |
·测定指标及方法 | 第25-26页 |
·几丁质酶活性及β-1, 3-葡聚糖酶活性的测定 | 第25页 |
·木质素含量及HRGP 含量的测定 | 第25-26页 |
2 结果与分析 | 第26-28页 |
·寡糖对几丁质酶活性的影响 | 第26页 |
·寡糖对β-1, 3-葡聚糖酶活性的影响 | 第26-27页 |
·寡糖对木质素含量的影响 | 第27-28页 |
·寡糖对HRGP 含量的影响 | 第28页 |
3 讨论 | 第28-30页 |
第五章 寡糖诱导向日葵活性氧代谢的变化 | 第30-35页 |
1 材料与方法 | 第30-31页 |
·供试材料 | 第30页 |
·试验方法 | 第30-31页 |
·试验设计 | 第30页 |
·超氧阴离子自由基(O_2~-·)产生速率的测定 | 第30-31页 |
·H_2O_2 含量测定 | 第31页 |
·过氧化氢(H_2O_2)的原位检测 | 第31页 |
2 结果与分析 | 第31-34页 |
·O_2~-·产生速率变化 | 第31-32页 |
·H_2O_2 含量的变化 | 第32页 |
·H_2O_2 的组织化学定位 | 第32-33页 |
·O_2~-·的组织化学定位 | 第33-34页 |
3 讨论 | 第34-35页 |
第六章 寡糖诱导向日葵抗锈病超微结构 | 第35-40页 |
1 材料与方法 | 第35页 |
·材料 | 第35页 |
·供试病原菌 | 第35页 |
·接种方法 | 第35页 |
·扫描电镜样品的制备 | 第35页 |
·透射电镜样品的制备 | 第35页 |
2 结果与分析 | 第35-38页 |
·病原菌入侵前期差异 | 第35-36页 |
·未诱导处理的病菌与寄主细胞的超微结构 | 第36-37页 |
·诱导处理后病菌与寄主细胞的超微结构 | 第37-38页 |
3 讨论 | 第38-40页 |
第七章 结论 | 第40-41页 |
致谢 | 第41-42页 |
参考文献 | 第42-50页 |
作者简介 | 第50页 |