摘要 | 第1页 |
英文摘要 | 第4-9页 |
中英文对照表 | 第9-10页 |
详细摘要 | 第10-16页 |
前言 | 第16-18页 |
第一部分 大鼠双侧卵巢切除、局灶脑梗塞/再灌注模型的建立 | 第18-32页 |
1. 材料和方法 | 第18-23页 |
·实验仪器与设备 | 第18-19页 |
·主要试剂和溶液 | 第19页 |
·实验用试剂配制 | 第19页 |
·实验方法 | 第19-23页 |
(1) 实验动物的准备 | 第19-20页 |
(2) 双侧卵巢切除模型的制备 | 第20页 |
(3) 动物分组 | 第20页 |
(4) 制备大脑中动脉梗塞/再灌注模型 | 第20-21页 |
(5) 标本取材 | 第21-22页 |
(6) 组织切片 | 第22页 |
(7) 组织TTC染色 | 第22页 |
(8) 组织切片HE染色 | 第22页 |
(9) 组织切片HE染色步骤 | 第22-23页 |
2. 结果 | 第23-24页 |
·大体标本 | 第23页 |
·HE染色光镜观察 | 第23-24页 |
3. 讨论 | 第24-26页 |
第一部分附图 | 第26-28页 |
小结 | 第28-29页 |
参考文献 | 第29-32页 |
第二部分 雌二醇对I/R 大鼠海马微血管密度以及细胞调亡的影响 | 第32-46页 |
1. 材料和方法 | 第33-36页 |
·实验仪器与设备 | 第33页 |
·主要试剂和溶液 | 第33页 |
·实验用试剂配制 | 第33-34页 |
·实验方法 | 第34-36页 |
(1) 组织切片 | 第34页 |
(2) 组织切片预处理 | 第34页 |
(3) 免疫组织染色(CD34) | 第34-35页 |
(4) 免疫组织染色(Bcl-2) | 第35页 |
(5) 微血管密度数据处理 | 第35页 |
(6) 凋亡细胞检测数据处理 | 第35-36页 |
(7) 统计学处理 | 第36页 |
2. 结果 | 第36-37页 |
·微血管密度测定 | 第36页 |
·凋亡细胞检测 | 第36-37页 |
·统计结果 | 第37页 |
3. 讨论 | 第37-40页 |
第二部分附图 | 第40-42页 |
小结 | 第42-43页 |
参考文献 | 第43-46页 |
第三部分雌二醇激素对脑梗塞/再灌注大鼠海马VEGF表达的影响 | 第46-69页 |
1. 材料和方法 | 第46-56页 |
·实验仪器与设备 | 第46-47页 |
·主要试剂和溶液 | 第47页 |
·实验用试剂配制 | 第47-49页 |
·实验方法 | 第49-56页 |
一、VEGF抗体免疫组化染色 | 第49-51页 |
(1) 组织切片 | 第49-50页 |
(2) 组织切片预处理 | 第50页 |
(3) 免疫组化染色 | 第50页 |
(4) 免疫组化染色阳性VEGF表达数据处理 | 第50-51页 |
二、VEGF 蛋白Western blot 分析 | 第51-52页 |
(1) 大鼠脑海马区组织蛋白提取 | 第51页 |
(2) 大鼠脑组织蛋白的SDS-PAGE电泳 | 第51页 |
(3) VEGF蛋白质印迹分析(Western blot法) | 第51-52页 |
(4) Western blot法检测VEGF蛋白表达数据分析 | 第52页 |
三、RT-PCR检测VEGF mRNA 表达量 | 第52-55页 |
(1) 组织标本的采集 | 第52-53页 |
(2) 引物设计 | 第53页 |
(3) RNA抽提 | 第53-54页 |
(4) RNA质量检测 | 第54页 |
(5) 总RNA反转录PCR | 第54-55页 |
(6) VEGF基因PCR扩增 | 第55页 |
(7) 电泳 | 第55页 |
(8) 半定量测定VEGF mRNA数据分析 | 第55页 |
四、统计学处理 | 第55-56页 |
2. 结果 | 第56-59页 |
·免疫组化染色 VEGF表达结果 | 第56-57页 |
·Western blot法测定VEGF蛋白表达分析结果 | 第57页 |
·VEGF mRNA相对表达量 | 第57-58页 |
·统计结果 | 第58-59页 |
3. 讨论 | 第59-62页 |
第三部分附图 | 第62-64页 |
小结 | 第64-65页 |
参考文献 | 第65-69页 |
全文总结 | 第69-70页 |
综述:雌二醇的脑保护 | 第70-82页 |
在读期间以第一作者发表的文章 | 第82-83页 |
致谢 | 第83页 |