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雌二醇对脑缺血/再灌注大鼠海马血管内皮生长因子表达的影响

摘要第1页
英文摘要第4-9页
中英文对照表第9-10页
详细摘要第10-16页
前言第16-18页
第一部分 大鼠双侧卵巢切除、局灶脑梗塞/再灌注模型的建立第18-32页
 1. 材料和方法第18-23页
   ·实验仪器与设备第18-19页
   ·主要试剂和溶液第19页
   ·实验用试剂配制第19页
   ·实验方法第19-23页
   (1) 实验动物的准备第19-20页
   (2) 双侧卵巢切除模型的制备第20页
   (3) 动物分组第20页
   (4) 制备大脑中动脉梗塞/再灌注模型第20-21页
   (5) 标本取材第21-22页
   (6) 组织切片第22页
   (7) 组织TTC染色第22页
   (8) 组织切片HE染色第22页
   (9) 组织切片HE染色步骤第22-23页
 2. 结果第23-24页
   ·大体标本第23页
   ·HE染色光镜观察第23-24页
 3. 讨论第24-26页
 第一部分附图第26-28页
 小结第28-29页
 参考文献第29-32页
第二部分 雌二醇对I/R 大鼠海马微血管密度以及细胞调亡的影响第32-46页
 1. 材料和方法第33-36页
   ·实验仪器与设备第33页
   ·主要试剂和溶液第33页
   ·实验用试剂配制第33-34页
   ·实验方法第34-36页
   (1) 组织切片第34页
   (2) 组织切片预处理第34页
   (3) 免疫组织染色(CD34)第34-35页
   (4) 免疫组织染色(Bcl-2)第35页
   (5) 微血管密度数据处理第35页
   (6) 凋亡细胞检测数据处理第35-36页
   (7) 统计学处理第36页
 2. 结果第36-37页
   ·微血管密度测定第36页
   ·凋亡细胞检测第36-37页
   ·统计结果第37页
 3. 讨论第37-40页
 第二部分附图第40-42页
 小结第42-43页
 参考文献第43-46页
第三部分雌二醇激素对脑梗塞/再灌注大鼠海马VEGF表达的影响第46-69页
 1. 材料和方法第46-56页
   ·实验仪器与设备第46-47页
   ·主要试剂和溶液第47页
   ·实验用试剂配制第47-49页
   ·实验方法第49-56页
   一、VEGF抗体免疫组化染色第49-51页
    (1) 组织切片第49-50页
    (2) 组织切片预处理第50页
    (3) 免疫组化染色第50页
    (4) 免疫组化染色阳性VEGF表达数据处理第50-51页
   二、VEGF 蛋白Western blot 分析第51-52页
    (1) 大鼠脑海马区组织蛋白提取第51页
    (2) 大鼠脑组织蛋白的SDS-PAGE电泳第51页
    (3) VEGF蛋白质印迹分析(Western blot法)第51-52页
    (4) Western blot法检测VEGF蛋白表达数据分析第52页
   三、RT-PCR检测VEGF mRNA 表达量第52-55页
    (1) 组织标本的采集第52-53页
    (2) 引物设计第53页
    (3) RNA抽提第53-54页
    (4) RNA质量检测第54页
    (5) 总RNA反转录PCR第54-55页
    (6) VEGF基因PCR扩增第55页
    (7) 电泳第55页
    (8) 半定量测定VEGF mRNA数据分析第55页
   四、统计学处理第55-56页
 2. 结果第56-59页
   ·免疫组化染色 VEGF表达结果第56-57页
   ·Western blot法测定VEGF蛋白表达分析结果第57页
   ·VEGF mRNA相对表达量第57-58页
   ·统计结果第58-59页
 3. 讨论第59-62页
 第三部分附图第62-64页
 小结第64-65页
 参考文献第65-69页
全文总结第69-70页
综述:雌二醇的脑保护第70-82页
在读期间以第一作者发表的文章第82-83页
致谢第83页

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