| 摘要 | 第1-8页 |
| ABSTRACT | 第8-12页 |
| 1 前言 | 第12-30页 |
| ·牛结核病的流行现状及危害 | 第12页 |
| ·牛结核病的公共卫生意义 | 第12-14页 |
| ·牛结核病的发现及病原 | 第14页 |
| ·牛结核病流行病学 | 第14-15页 |
| ·致病机理与发病机制 | 第15-17页 |
| ·机体抗牛分枝杆菌感染的免疫机理 | 第17-18页 |
| ·牛分枝杆菌分子生物学研究 | 第18-21页 |
| ·牛分枝杆菌基因组 | 第18-19页 |
| ·比较基因组学研究 | 第19-20页 |
| ·与分型和检测有关的基因特征 | 第20-21页 |
| ·牛分枝杆菌蛋白质抗原的研究 | 第21-24页 |
| ·牛结核病的诊断 | 第24-28页 |
| ·细菌学检查方法 | 第24页 |
| ·免疫学诊断方法 | 第24-27页 |
| ·分子生物学检测方法 | 第27-28页 |
| ·牛奶检测的应用及意义 | 第28-29页 |
| ·牛结核病的防治 | 第29-30页 |
| 2 研究目的和意义 | 第30-31页 |
| 3 材料与方法 | 第31-38页 |
| ·材料 | 第31-32页 |
| ·牛型结核菌素PPD与抗原 | 第31页 |
| ·血清，乳样及酶标二抗 | 第31-32页 |
| ·ELISA主要试剂 | 第32页 |
| ·ELISA相关溶液的配制 | 第32页 |
| ·方法 | 第32-38页 |
| ·PPD-ELISA抗原包被浓度和血清稀释度的确定 | 第32-33页 |
| ·封闭液的选择 | 第33页 |
| ·血清及酶标二抗稀释液的选择 | 第33-34页 |
| ·底物反应时间的选择 | 第34页 |
| ·终止液的选择 | 第34页 |
| ·PPD-ELISA临界值的确定 | 第34页 |
| ·ELISA检测牛奶可行性的探讨 | 第34页 |
| ·牛结核特异性抗体ELISA检测方法的建立 | 第34-35页 |
| ·特异性抗体ELISA检测方法敏感性的比较 | 第35页 |
| ·重复性试验 | 第35页 |
| ·敏感性试验 | 第35-37页 |
| ·特异性试验 | 第37页 |
| ·牛结核特异抗体ELISA检测方法的临床应用 | 第37-38页 |
| 4 结果 | 第38-54页 |
| ·PPD-ELISA最佳反应条件的确立 | 第38-43页 |
| ·PPD-ELISA抗原包被浓度和血清稀释度的确定 | 第38页 |
| ·PPD-ELISA封闭液试验结果 | 第38-39页 |
| ·血清及酶标二抗稀释液选择结果 | 第39-40页 |
| ·底物反应时间的选择 | 第40-41页 |
| ·终止液选择结果 | 第41-43页 |
| ·PPD-ELISA改进后检测程序 | 第43页 |
| ·PPD-ELISA阴阳界限的确定 | 第43页 |
| ·ELISA检测牛奶可行性的探讨 | 第43-44页 |
| ·牛奶的保存期试验 | 第43页 |
| ·ELISA检测牛奶与检测血清的比较 | 第43-44页 |
| ·牛结核特异抗体ELISA检测方法的建立 | 第44页 |
| ·抗原MP883、MP870和CFP10-ESAT-6包被浓度的确定 | 第44页 |
| ·临界值的确定 | 第44页 |
| ·牛结核特异抗体ELISA检测方法比较 | 第44-45页 |
| ·重复性试验 | 第45页 |
| ·敏感性试验 | 第45-47页 |
| ·对确诊牛的检测 | 第45-46页 |
| ·对严重污染牛场的检测 | 第46-47页 |
| ·特异性试验 | 第47-48页 |
| ·交叉反应试验 | 第47-48页 |
| ·对健康牛场的检测 | 第48页 |
| ·牛结核特异抗体ELISA检测方法的临床初步应用 | 第48-54页 |
| ·对不同地区牛场结核病的普查 | 第48-49页 |
| ·对牛奶的跟踪检测 | 第49-51页 |
| ·ELISA检测强阳性牛的解剖观察 | 第51-54页 |
| 5 讨论 | 第54-60页 |
| ·PPD-ELISA最佳反应条件的确立 | 第54-55页 |
| ·关于ELISA检测牛奶中结核抗体的探讨 | 第55-56页 |
| ·牛结核特异抗体ELISA检测方法的建立 | 第56-59页 |
| ·牛结核特异抗体ELISA检测方法的临床应用 | 第59-60页 |
| 6 结论 | 第60-61页 |
| 参考文献 | 第61-68页 |
| 致谢 | 第68-69页 |
| 附录 | 第69页 |
