| 摘要 | 第1-6页 |
| ABSTRACT | 第6-8页 |
| 目录 | 第8-12页 |
| 第一章 文献综述 | 第12-35页 |
| 1 白菜类作物的起源、演化和分类研究进展 | 第12-20页 |
| 1．1 白菜类作物的起源与演化 | 第12-17页 |
| 1．1．1 大白菜(Chinese cabbage, ssp. pekinensis)的起源与演化 | 第13-14页 |
| 1．1．2 普通白菜(Pak Choi, ssp. chinensis)的起源与进化 | 第14页 |
| 1．1．3 菜薹(Caitai, ssp. parachinensis)的起源与演化 | 第14-15页 |
| 1．1．4 薹菜(Taicai's或Tai tsai's, ssp. chinensis)的起源与演化 | 第15页 |
| 1．1．5 塌菜类(Wuta-tsai, ssp. narinosa)的起源与演化 | 第15页 |
| 1．1．6 日本水菜(Mizuna和Mibuna, ssp. nipposinica)的起源与演化 | 第15页 |
| 1．1．7 意大利菜心(Broccoletto, ssp. broccoletto)的起源与进化 | 第15页 |
| 1．1．8 芜菁(Turnip, ssp. rapa)的起源与演化 | 第15-16页 |
| 1．1．9 油用白菜类作物(ssp. oleifera)的起源与进化 | 第16-17页 |
| 1．2 白菜类作物的分类研究 | 第17-20页 |
| 1．2．1 白菜类蔬菜的分类学研究 | 第18-19页 |
| 1．2．1 油用白菜类作物的分类学研究 | 第19-20页 |
| 2 白菜类作物分子标记研究进展 | 第20-29页 |
| 2．1 白菜类作物遗传图谱研究 | 第20-23页 |
| 2．1．1 作图群体的建立 | 第20-21页 |
| 2．1．2 遗传标记 | 第21-23页 |
| 2．1．2．1 RFLP(Restriction Fragment Length Polymorphisms)标记 | 第21页 |
| 2．1．2．2 RAPD(Random Amplified Polymorphic DNA)标记 | 第21-22页 |
| 2．1．2．3 AFLP(Amplified Fragment Length Polymorphism)标记 | 第22页 |
| 2．1．2．4 SSR(Microsatellite or Single Sequence Repeat)标记 | 第22页 |
| 2．1．2．5 其它以PCR为基础的标记 | 第22-23页 |
| 2．1．3 遗传连锁图 | 第23页 |
| 2．2 白菜类作物基因定位研究 | 第23-29页 |
| 2．2．1 质量性状基因定位 | 第25-27页 |
| 2．2．1．1 种皮颜色 | 第25页 |
| 2．2．1．2 抗病性基因 | 第25页 |
| 2．2．1．3 脂肪酸成分基因 | 第25-27页 |
| 2．2．1．4 其它质量性状基因 | 第27页 |
| 2．2．2 数量性状基因定位 | 第27-29页 |
| 2．2．1．1 形态性状 | 第27页 |
| 2．2．1．2 春化要求和抽薹开花时间 | 第27-28页 |
| 2．2．1．3 耐热性 | 第28-29页 |
| 2．3 基因组比较研究 | 第29页 |
| 3 低植酸作物遗传育种研究进展 | 第29-33页 |
| 3．1 植酸的生物学研究 | 第30-31页 |
| 3．2 低植酸突变系及其遗传研究 | 第31-32页 |
| 3．2．1 低植酸突变系筛选 | 第31页 |
| 3．2．2 低植酸性状的遗传研究 | 第31-32页 |
| 3．3 植酸性状的分子生物学研究 | 第32-33页 |
| 3．3．1 植酸性状的分了标记 | 第32页 |
| 3．3．2 低植酸性状产生的分子机制 | 第32-33页 |
| 4 本研究的目的和意义 | 第33-35页 |
| 第二章 白菜类作物遗传多样性的AFLP分析 | 第35-52页 |
| 1 引言 | 第35页 |
| 2 材料与方法 | 第35-39页 |
| 2．1 实验材料 | 第35-36页 |
| 2．2 实验方法 | 第36-39页 |
| 2．2．1 形态性状的记载 | 第36-37页 |
| 2．2．2 基因组DNA提取 | 第37页 |
| 2．2．3 AFLP分析 | 第37-39页 |
| 2．2．4 数据分析 | 第39页 |
| 3 结果与分析 | 第39-48页 |
| 3．1 遗传变异分析 | 第39-43页 |
| 3．2 AFLP遗传多样性分析 | 第43-45页 |
| 3．3 表型变异分析 | 第45-48页 |
| 4 讨论 | 第48-49页 |
| 5 小结 | 第49-52页 |
| 第三章 白菜类作物植酸和有效磷含量自然变异的初步分析 | 第52-62页 |
| 1 引言 | 第52页 |
| 2 材料与方法 | 第52-54页 |
| 2．1 实验材料 | 第52页 |
| 2．2 实验方法 | 第52-54页 |
| 2．2．1 HPLC方法快速测定植酸(phyate)和有效磷(HPO4~(2-)) | 第52-53页 |
| 2．2．2 植酸标准溶液配置 | 第53-54页 |
| 3 结果与分析 | 第54-57页 |
| 3．1 HPLC方法快速检测植酸和有效磷含量的稳定性 | 第54页 |
| 3．2 植酸和有效磷含量自然变异分析 | 第54-57页 |
| 3．2．1 植酸(phytate)和有效磷(phosphate，HPO4~(2-))含量的自然变异 | 第54-55页 |
| 3．2．2 不同变种或亚种等栽培类群的植酸和有效磷含量变异 | 第55-57页 |
| 4 讨论 | 第57-58页 |
| 5 小结 | 第58-62页 |
| 第四章 白菜类作物分离群体的构建 | 第62-73页 |
| 1 引言 | 第62页 |
| 2 材料与方法 | 第62-64页 |
| 2．1 材料 | 第62页 |
| 2．2 方法 | 第62-64页 |
| 2．2．1 F2分离群体构建方法 | 第62-64页 |
| 2．2．2 DH分离群体构建方法 | 第64页 |
| 3 结果与分析 | 第64-71页 |
| 3．1 供试亲本多态性分析 | 第64-65页 |
| 3．2 F2暂时分离群体的构建 | 第65-68页 |
| 3．3 DH分离群体的构建 | 第68-71页 |
| 4 讨论 | 第71页 |
| 5 小结 | 第71-73页 |
| 第五章 白菜类作物分子遗传图谱的构建与分析 | 第73-87页 |
| 1 引言 | 第73页 |
| 2 材料与方法 | 第73-75页 |
| 2．1 材料 | 第73-74页 |
| 2．2 方法 | 第74-75页 |
| 3 结果与分析 | 第75-83页 |
| 3．1 AFLP标记多态性 | 第75-77页 |
| 3．2 AFLP标记的偏分离分析 | 第77-78页 |
| 3．3 分子遗传图谱的构建与分析 | 第78-83页 |
| 3．3．1 利用F2群体构建的分子遗传图谱 | 第78-81页 |
| 3．3．2 利用DH群体构建的分子遗传图谱 | 第81-83页 |
| 4 讨论 | 第83-85页 |
| 4．1 标记类型的选用 | 第83-84页 |
| 4．2 作图群体的选用 | 第84页 |
| 4．3 分子标记的偏分离 | 第84-85页 |
| 4．4 图谱的比较和完善 | 第85页 |
| 5 小结 | 第85-87页 |
| 第六章 白菜类作物重要农艺性状的QTL定位 | 第87-104页 |
| 1 引言 | 第87页 |
| 2 材料与方法 | 第87-88页 |
| 2．1 材料 | 第87-88页 |
| 2．2 数据整理和QTL分析 | 第88页 |
| 3 结果与分析 | 第88-102页 |
| 3．1 性状表型值极其变异 | 第88-92页 |
| 3．2 重要农艺性状的QTL定位 | 第92-100页 |
| 3．2．1 部分叶片性状的QTL定位 | 第92-94页 |
| 3．2．2 开花和籽粒性状的QTL定位与分析 | 第94-96页 |
| 3．2．3 植酸和有效磷含量的QTL定位 | 第96-100页 |
| 3．3 部分性状的分子标记在分离群体中的分布 | 第100-102页 |
| 4 讨论 | 第102-103页 |
| 5 小结 | 第103-104页 |
| 参考文献 | 第104-117页 |
| 致谢 | 第117-118页 |
| 作者简历 | 第118页 |
