中文摘要 | 第1-5页 |
英文摘要 | 第5-10页 |
1 绪论 | 第10-21页 |
·问题的提出及研究意 | 第10-11页 |
·问题的提出 | 第10页 |
·研究的意义 | 第10-11页 |
·国内外研究现状 | 第11-19页 |
·砷剂临床应用研究进展 | 第11-14页 |
·多糖的生物活性及其应用研究进展 | 第14-18页 |
·大枣多糖的研究进展 | 第18-19页 |
·本文研究的目的和研究内容 | 第19页 |
·本文研究的目的 | 第19页 |
·本文主要研究内容 | 第19页 |
·实验技术路线 | 第19-21页 |
2 大枣多糖的提取 | 第21-35页 |
·引言 | 第21页 |
·实验材料、试剂和仪器设备 | 第21-22页 |
·实验材料与试剂 | 第21-22页 |
·实验仪器与设备 | 第22页 |
·实验方法 | 第22-27页 |
·大枣多糖提取的工艺流程 | 第22页 |
·大枣粗多糖的制备 | 第22页 |
·脱脂 | 第22-23页 |
·标准葡萄糖曲线制作及糖含量测定 | 第23-24页 |
·脱蛋白方法比较及蛋白质含量的测定 | 第24-25页 |
·脱色 | 第25-26页 |
·用DEAE-纤维素离子柱层析法分离纯化大枣多糖 | 第26-27页 |
·理化性质分析 | 第27页 |
·结果与分析 | 第27-34页 |
·大枣粗糖的提取 | 第27页 |
·葡萄糖标准曲线 | 第27-28页 |
·蛋白质标准曲线与脱蛋白方法比较 | 第28-29页 |
·脱色结果 | 第29-30页 |
·DEAE-纤维素分离多糖结果 | 第30-31页 |
·大枣多糖的理化性质 | 第31-34页 |
·本章小结 | 第34-35页 |
3 JPS与R_2体外协同抗肿瘤研究 | 第35-43页 |
·引言 | 第35页 |
·实验材料 | 第35-37页 |
·主要仪器 | 第35页 |
·主要试剂及其配制 | 第35-37页 |
·培养器皿及其处理 | 第37页 |
·HepG-2 细胞的复苏,培养及传代 | 第37页 |
·实验方法 | 第37-38页 |
·MTT法检测JPS 和R_2对HepG-2 细胞生长的影响 | 第37-38页 |
·细胞形态学观察JPS 和R_2对细胞的影响 | 第38页 |
·流失细胞仪检测JPS 和R_2对细胞周期和凋亡的影响 | 第38页 |
·统计学分析 | 第38页 |
·结果与分析 | 第38-42页 |
·JPS 对HepG-2 细胞生长的影响 | 第38-40页 |
·JPS 与R_2联合应用对HepG-2细胞生长影响 | 第40-41页 |
·JPS 和R_2对HepG-2 细胞形态的影响 | 第41-42页 |
·JPS 和R_2对HepG-2 细胞周期和凋亡的影响 | 第42页 |
·本章小结 | 第42-43页 |
4 JPS与R_2体内协同抗肿瘤研究 | 第43-58页 |
·引言 | 第43页 |
·实验材料与药品 | 第43-44页 |
·试验动物与细胞株 | 第43页 |
·主要试剂和仪器 | 第43-44页 |
·实验药品的配制 | 第44页 |
·实验方法 | 第44-47页 |
·实验分组 | 第44-45页 |
·动物肿瘤模型的建立 | 第45页 |
·结果观察 | 第45-46页 |
·JPS 抗氧化酶活性测定 | 第46页 |
·白细胞计数和血小板计数 | 第46页 |
·病理组织学检测 | 第46-47页 |
·透射电镜检测肿瘤细胞 | 第47页 |
·数据处理 | 第47页 |
·结果与分析 | 第47-56页 |
·药物对荷瘤小鼠一般状况的观察 | 第47页 |
·JPS 对小鼠移植性肿瘤S_180生长的影响 | 第47-50页 |
·R_2对小鼠移植性肿瘤S_180的影响 | 第50-52页 |
·R_2与JPS 联合应用对移植性肿瘤S_180的影响 | 第52-54页 |
·病理学检查结果 | 第54-56页 |
·电镜图片分析 | 第56页 |
·本章小结 | 第56-58页 |
5 讨论 | 第58-62页 |
·体外抗肿瘤筛选实验 | 第58-59页 |
·体外抗肿瘤筛选实验 | 第59-62页 |
6 结论与后续工作建议 | 第62-64页 |
·主要结论 | 第62页 |
·后续研究工作建议 | 第62-64页 |
致谢 | 第64-65页 |
参考文献 | 第65-69页 |
附: | 第69-78页 |
1 作者在攻读硕士学位期间发表的论文目录 | 第69-70页 |
2 图片 | 第70-78页 |
独创性声明 | 第78页 |
学位论文版权使用授权书 | 第78页 |