| 前言 | 第1-15页 |
| 材料与方法 | 第15-26页 |
| 1 材料与试剂 | 第15页 |
| 2 试验仪器 | 第15-16页 |
| 3 试验方法 | 第16-26页 |
| 3．1 海藻海蒿子多糖的提取 | 第16-18页 |
| 3．2 多糖样品理化分析 | 第18-20页 |
| 3．2．1 含量分析 | 第18-19页 |
| 3．2．5 分子量 | 第19-20页 |
| 3．2．6 单糖组成 | 第20页 |
| 3．2．7 红外光谱 | 第20页 |
| 3．3 多糖组分的分离 | 第20-22页 |
| 3．3．1 凝胶渗透色谱分析 | 第20-21页 |
| 3．3．2 柱层析分离 | 第21页 |
| 3．3．3 SPH70P3与 SPH70P4理化分析 | 第21-22页 |
| 3．4 多糖 SPH70P4的结构研究 | 第22-24页 |
| 3．4．1 甲基化 | 第22页 |
| 3．4．2 甲基化样品GC/MS分析 | 第22-23页 |
| 3．4．3 高碘酸氧化 | 第23页 |
| 3．4．4 Smith降解 | 第23-24页 |
| 3．4．4．1 完全酸水解 | 第23页 |
| 3．4．4．1．1 完全酸水解样品液相色谱分析 | 第23页 |
| 3．4．4．1．2 完全酸水解样品气相色谱分析 | 第23页 |
| 3．4．4．2 部分酸水解 | 第23-24页 |
| 3．4．4．2．1 部分酸水解样品纯度与分子量分析 | 第24页 |
| 3．4．4．2．2 部分酸水解样品气相色谱分析 | 第24页 |
| 3．4．5 碱对硫酸基含量的影响 | 第24页 |
| 3．4．6 多糖三螺旋结构分析 | 第24页 |
| 3．5 抗肿瘤活性初步研究 | 第24-26页 |
| 结果与讨论 | 第26-63页 |
| 1 海藻海蒿子多糖的提取 | 第26-27页 |
| 1．1 海蒿子多糖提取 | 第26-27页 |
| 2 多糖样品理化分析 | 第27-36页 |
| 2．1 分子量及理化性质分析 | 第27-30页 |
| 2．2 单糖组成分析 | 第30-31页 |
| 2．3 红外光谱分析 | 第31-36页 |
| 2．3．1 SPC60，SPC70，SPH60，SPH70红外光谱分析 | 第31-34页 |
| 2．3．2 SPA，SPC30，SPH30红外光谱分析 | 第34-36页 |
| 3 多糖组分对肿瘤细胞增殖的影响 | 第36-37页 |
| 4 多糖分离与分析 | 第37-48页 |
| 4．1 凝胶渗透色谱分析 | 第37-39页 |
| 4．2 色谱分离 | 第39-44页 |
| 4．2．1 离子交换色谱 | 第39-41页 |
| 4．2．2 凝胶渗透色谱 | 第41-44页 |
| 4．3 纯化样品 SPH70P3和 SPH70P4的分析 | 第44-48页 |
| 4．3．1 理化分析 | 第44页 |
| 4．3．2 纯度检测与分子量测定 | 第44-45页 |
| 4．3．3 红外光谱分析 | 第45-47页 |
| 4．3．4 单糖组成分析 | 第47-48页 |
| 5 多糖 SPH70P4的结构研究 | 第48-60页 |
| 5．1 甲基化分析 | 第48-54页 |
| 5．1．1 甲基化程度的确定 | 第49页 |
| 5．1．2 甲基化样品的GC/MS分析 | 第49-54页 |
| 5．2 高碘酸氧化 | 第54-55页 |
| 5．3 Smith降解产物分析 | 第55-59页 |
| 5．3．1 全水解分析 | 第55-57页 |
| 5．3．1．1 高碘酸氧化全水解样品液相色谱分析 | 第55-56页 |
| 5．3．1．2 高碘酸氧化全水解样品气相色谱分析 | 第56-57页 |
| 5．3．2 部分酸水解分析 | 第57-59页 |
| 5．3．2．1 部分酸水解样品纯度与分子量分析 | 第57-58页 |
| 5．3．2．2 部分酸水解样品气相色谱分析 | 第58-59页 |
| 5．4 硫酸基位置确定 | 第59-60页 |
| 5．5 多糖SPH70P4三螺旋结构分析 | 第60页 |
| 6 分离纯化多糖对肿瘤细胞增殖的影响 | 第60-63页 |
| 结论 | 第63-64页 |
| 参考文献 | 第64-69页 |
| 附录1 | 第69-78页 |
| 附录2 | 第78-90页 |
| 致谢 | 第90页 |
