| 中文摘要 | 第1-11页 |
| 英文摘要 | 第11-14页 |
| 缩略词表 | 第14-15页 |
| 前言 | 第15-20页 |
| 第一章 菜籽脱臭馏出物中维生素E的提取 | 第20-50页 |
| 1 材料和方法 | 第20-21页 |
| ·实验材料 | 第20页 |
| ·主要试剂 | 第20页 |
| ·主要仪器 | 第20-21页 |
| 2 实验方法 | 第21-24页 |
| ·菜籽脱臭馏出物的甲酯化处理 | 第21-23页 |
| ·测定方法 | 第21页 |
| ·V_E的HPLC测定条件 | 第21页 |
| ·FFA测定 | 第21页 |
| ·甘油测定 | 第21页 |
| ·单因素试验 | 第21页 |
| ·游离脂肪酸甲酯化的基本操作 | 第21页 |
| ·甘油酯水解-酯化的基本操作 | 第21页 |
| ·响应面实验 | 第21-23页 |
| ·甲酯化实验设计 | 第21-22页 |
| ·甘油酯水解-甲酯化实验设 | 第22-23页 |
| ·超临界萃取方法 | 第23-24页 |
| ·超临界CO_2萃取V_E的单因素实验 | 第23页 |
| ·携带剂与超临界CO_2提取V_E | 第23-24页 |
| ·优化实验条件的验证 | 第24页 |
| ·带携带剂的超临界CO_2提取V方法 | 第24页 |
| 3 结果与分析 | 第24-47页 |
| ·菜籽脱臭馏出物中游离脂肪酸的甲酯化处理 | 第24-30页 |
| ·单因素试验 | 第24-26页 |
| ·温度对酯化效果的影响 | 第24-25页 |
| ·酯化时间对酯化效果的影响 | 第25页 |
| ·浓硫酸用量对酯化效果的影响 | 第25-26页 |
| ·响应面实验 | 第26-30页 |
| ·菜籽脱臭馏出物中甘油酯水解-甲酯化处理 | 第30-35页 |
| ·单因素试验 | 第30-31页 |
| ·甲醇钠用量对水解-甲酯化效果的影响 | 第30页 |
| ·温度对水解-甲酯化效果的影响 | 第30页 |
| ·时间对水解-甲酯化效果的影响 | 第30-31页 |
| ·响应面实验 | 第31-35页 |
| ·菜籽脱臭馏出物预处理小结 | 第35页 |
| ·V_E在超临界CO_2萃取中的溶解度参数理论估算 | 第35-40页 |
| ·超临界二氧化碳的溶解度参数δ_1 | 第35页 |
| ·V_E在超临界二氧化碳中的溶解度参数δ_2的估算 | 第35-36页 |
| ·超临界CO_2中V_E可溶性压力的估算 | 第36-40页 |
| ·V_E的超临界流体萃取 | 第40-47页 |
| ·超临界CO_2萃取V_E的单因子试验 | 第40-41页 |
| ·萃取压力的影响 | 第40页 |
| ·温度的影响 | 第40-41页 |
| ·萃取温度的影响 | 第40-41页 |
| ·分离温度的影响 | 第41页 |
| ·流量的影响 | 第41页 |
| ·超临界CO_2萃取V_E的正交优化工艺实验 | 第41-44页 |
| ·优化实验条件的验证 | 第44页 |
| ·携带剂与超临界CO_2提取V_E | 第44-47页 |
| 4 结论 | 第47-50页 |
| 第二章 菜籽V_E的理化性质与组成 | 第50-58页 |
| 1 材料与方法 | 第50-51页 |
| ·实验材料 | 第50页 |
| ·主要试剂 | 第50页 |
| ·主要仪器 | 第50页 |
| ·实验内容和方法 | 第50-51页 |
| ·最佳检测波长的选择 | 第50页 |
| ·样品的液质分析 | 第50-51页 |
| ·灰分的测定 | 第51页 |
| ·旋光度的测定 | 第51页 |
| ·折光度的测定 | 第51页 |
| ·酸价的测定 | 第51页 |
| ·重金属含量 | 第51页 |
| 2 实验结果和分析 | 第51-56页 |
| ·V_E的HPLC方法的确定 | 第52页 |
| ·超临界萃取菜籽V_E产品的组成定性和含量测定 | 第52-55页 |
| ·菜籽V_E的理化指标 | 第55-56页 |
| 3 结论 | 第56-58页 |
| 第三章 维生素E的降血脂作用 | 第58-83页 |
| 1 实验材料 | 第58-59页 |
| ·实验材料 | 第58页 |
| ·主要试剂 | 第58-59页 |
| ·主要仪器 | 第59页 |
| 2 实验方法 | 第59-60页 |
| ·降血脂预防实验 | 第59页 |
| ·降血脂治疗实验 | 第59页 |
| ·血样采集及预处理 | 第59-60页 |
| ·测定指标及方法 | 第60页 |
| ·体重及摄食量的测定 | 第60页 |
| ·血清总胆固醇(TC)的测定 | 第60页 |
| ·血清总甘油三酯(TG)的测定 | 第60页 |
| ·血清高密度脂蛋白(HDL-C)的测定 | 第60页 |
| ·血清低密度脂蛋白(LDL-C)的测定 | 第60页 |
| ·动脉硬化指数(AI)的测定 | 第60页 |
| ·血清丙二醛(MDA)的测定 | 第60页 |
| ·血清超氧化歧化酶(SOD)的测定 | 第60页 |
| ·肝系数的测定 | 第60页 |
| ·肝脏总胆固醇(TC)测定 | 第60页 |
| ·肝脏总甘油三酯(TG)测定 | 第60页 |
| ·粪重及粪脂测定 | 第60页 |
| ·血管病理观察 | 第60页 |
| 3 结果与分析 | 第60-81页 |
| ·预防实验 | 第60-72页 |
| ·摄食量及体重 | 第60-62页 |
| ·血清总胆固醇(TC)的测定 | 第62页 |
| ·血清总甘油三酯(TG)的测定 | 第62-63页 |
| ·血清高密度脂蛋白(HDL-C)的测定 | 第63页 |
| ·血清低密度脂蛋白(LDL-C)的测定 | 第63-64页 |
| ·动脉硬化指数(AI)的测定 | 第64-65页 |
| ·血清丙二醛(MDA)的测定 | 第65-66页 |
| ·血清超氧化歧化酶(SOD)的测定 | 第66页 |
| ·肝系数的测定 | 第66-68页 |
| ·肝脏总胆固醇(TC)的测定 | 第68页 |
| ·肝脏总甘油三酯(TG)的测定 | 第68-69页 |
| ·粪重及粪脂测定 | 第69-70页 |
| ·血管病理观察 | 第70-72页 |
| ·治疗试验 | 第72-81页 |
| ·体重及摄食量的测定 | 第72页 |
| ·血清总胆固醇(TC)的测定 | 第72-73页 |
| ·血清总甘油三酯(TG)的测定 | 第73-74页 |
| ·血清高密度脂蛋白(HDL-C)的测定 | 第74页 |
| ·血清低密度脂蛋白(LDL-C)的测定 | 第74-75页 |
| ·动脉硬化指数(AI)的测定 | 第75-76页 |
| ·血清丙二醛(MDA)的测定 | 第76-77页 |
| ·血清超氧化歧化酶(SOD)的测定 | 第77页 |
| ·肝系数的测定 | 第77-78页 |
| ·肝脏总胆固醇(TC)的测定 | 第78-79页 |
| ·肝脏总甘油三酯(TG)的测定 | 第79-80页 |
| ·粪重及粪脂测定 | 第80-81页 |
| ·血管病理观察 | 第81页 |
| 4 结论 | 第81页 |
| 5 讨论 | 第81-83页 |
| 第四章 维生素E抗肿瘤活性的研究 | 第83-94页 |
| 1 材料 | 第83-84页 |
| ·实验材料 | 第83页 |
| ·主要试剂 | 第83-84页 |
| ·主要仪器 | 第84页 |
| 2 实验方法 | 第84-86页 |
| ·接种方法 | 第84页 |
| ·实验方法 | 第84-85页 |
| ·肿瘤抑制实验 | 第85页 |
| ·巨噬细胞吞噬实验 | 第85页 |
| ·迟发型超敏反应(DTH) | 第85页 |
| ·血清溶血素含量测定 | 第85-86页 |
| ·V_E对小鼠血清MDA的影响 | 第86页 |
| ·V_E对小鼠血清SOD的影响 | 第86页 |
| ·肿瘤组织病理学观察 | 第86页 |
| 3 实验结果与分析 | 第86-92页 |
| ·菜籽V_E对荷S_(180)瘤小鼠得抑瘤作用荷对小鼠免疫器官得影响 | 第86-88页 |
| ·菜籽V_E对荷S_(180)瘤小鼠腹腔巨噬细胞吞噬能力的影响 | 第88页 |
| ·菜籽V_E对荷S_(180)小鼠迟发型超敏反应的影响 | 第88页 |
| ·菜籽V_E对荷S_(180)小鼠血清溶血素含量的影响 | 第88-89页 |
| ·菜籽V_E对荷S_(180)瘤小鼠血清SOD的影响 | 第89-90页 |
| ·V_E对荷S_(180)瘤小鼠血清MDA的影响 | 第90页 |
| ·肿瘤组织病理学观察 | 第90-92页 |
| 4 结论 | 第92-93页 |
| 5 讨论 | 第93-94页 |
| 第五章 维生素E对Hela细胞凋亡作用的研究 | 第94-109页 |
| 1 材料与方法 | 第94-95页 |
| ·实验材料 | 第94页 |
| ·主要试剂 | 第94-95页 |
| ·主要仪器 | 第95页 |
| 2 实验方法 | 第95-100页 |
| ·细胞培养 | 第95页 |
| ·细胞生长抑制实验(MTT法) | 第95页 |
| ·Hela细胞形态学观察 | 第95-96页 |
| ·Hela细胞可见光下的形态观察 | 第95-96页 |
| ·Hela细胞荧光下的凋亡形态观察 | 第96页 |
| ·受检细胞的收集 | 第96页 |
| ·吖啶橙／溴乙锭双染色及荧光显微镜观察 | 第96页 |
| ·原位末端标记法(TUNEL)检测人宫颈癌Hela细胞凋亡单细胞 | 第96-97页 |
| ·多聚赖氨酸片准备 | 第96页 |
| ·细胞培养 | 第96页 |
| ·样品处理及涂片 | 第96-97页 |
| ·细胞凋亡染色观察 | 第97页 |
| ·电泳检测V_E对Hela细胞DNA的损伤作用 | 第97-99页 |
| ·DNA提取及电泳 | 第97页 |
| ·单细胞电泳检测V_E对Hela细胞DNA的损伤作用 | 第97-99页 |
| ·试剂与配制 | 第97-98页 |
| ·细胞培养 | 第98页 |
| ·样品处理 | 第98页 |
| ·制片 | 第98-99页 |
| ·流式细胞仪检测菜籽V_E对Hela细胞细胞周期的影响 | 第99页 |
| ·RT-PCR检测V_E对Hela细胞的bcl-2基因表达的影响 | 第99-100页 |
| 3 结果与分析 | 第100-107页 |
| ·MTT法实验结果 | 第100页 |
| ·Hela细胞形态学观察 | 第100-102页 |
| ·可见光观察人宫颈癌细胞形态学变化 | 第100页 |
| ·吖啶橙／溴乙锭双染法观察V_E对Hela细胞凋亡的影响 | 第100-102页 |
| ·TUNEL检测人宫颈癌Hela细胞凋亡 | 第102-103页 |
| ·单细胞电泳检测V_E对Hela细胞DNA的损伤作用 | 第103-106页 |
| ·DNA Ladder检测 | 第103-104页 |
| ·单细胞电泳实验 | 第104-106页 |
| ·V_E对人宫颈癌Hela细胞细胞周期的影响 | 第106-107页 |
| ·RT-PCR检测V_E对Hela细胞的bcl-2基因表达的影响 | 第107页 |
| 4 结论 | 第107页 |
| 5 讨论 | 第107-109页 |
| 第六章 结论 | 第109-112页 |
| 第七章 超临界流体萃取技术研究进展 | 第112-126页 |
| 参考文献 | 第126-134页 |
| 致谢 | 第134-136页 |
