摘要 | 第1-8页 |
第一章 前言 | 第8-16页 |
1 植物性别分化程序 | 第8-11页 |
·单性花的性别决定与器官发生原理 | 第8-10页 |
·性别分化特定的大分子标记物 | 第10-11页 |
2 性别分化的诱导信号 | 第11-13页 |
·植物激素与性别分化 | 第11-12页 |
·多胺与性别分化的关系 | 第12-13页 |
3 性决定基因 | 第13-16页 |
·性决定及其相关基因克隆 | 第14页 |
·MADS BOX基因与性别分化 | 第14-16页 |
第二章 黄瓜性别分化的形态学研究 | 第16-22页 |
1 材料与方法 | 第16-17页 |
·植物材料 | 第16页 |
·方法 | 第16-17页 |
·石蜡切片 | 第16-17页 |
2 结果与分析 | 第17-20页 |
·从花芽分化起始到产生两性花 | 第17页 |
·从两性花到成熟的雌、雄花 | 第17页 |
·雌、雄花的发育时期 | 第17-20页 |
3 讨论 | 第20-22页 |
第三章 黄瓜雄花形成过程中心皮的发育 | 第22-30页 |
1 材料与方法 | 第22-23页 |
·植物材料 | 第22页 |
·方法 | 第22-23页 |
·石蜡切片 | 第22页 |
·过氧化物同工酶和脂酶同工酶电泳 | 第22页 |
·SDS聚丙烯酰胺凝胶电泳(SDS-PAGE) | 第22-23页 |
2 实验结果 | 第23-27页 |
·雄花心皮形态观察 | 第23页 |
·不同发育时期雄花心皮RNA活性染色 | 第23-25页 |
·雄花心皮不同发育时期过氧化物同工酶电泳 | 第25-26页 |
·雄花心皮不同发育时期酯酶同工酶电泳 | 第26页 |
·雄花不同发育时期心皮蛋白质SDS-PAGE分析 | 第26-27页 |
3 讨论 | 第27-30页 |
第四章 黄瓜亚精胺合成酶基因的克隆及其在性别分化的作用 | 第30-49页 |
1 实验材料与方法 | 第30-38页 |
·植物材料及其处理 | 第30页 |
·总RNA提取与质量的检测 | 第30-31页 |
·双链cDNA的合成 | 第31-33页 |
·第一链cDNA的合成 | 第31-32页 |
·cDNA的LD-PCR扩增 | 第32-33页 |
·利用简并PCR从黄瓜茎尖组织cDNA获得亚精胺合成酶基因片段 | 第33页 |
·引物的设计 | 第33页 |
·PCR扩增体系 | 第33页 |
·PCR反应程序 | 第33页 |
·RACE法克隆黄瓜亚精胺合成酶基因全长cDNA | 第33-34页 |
·3’-RACE克隆3’末端cDNA | 第33-34页 |
·5’-RACE克隆5’末端cDNA片断 | 第34页 |
·PCR产物的回收和纯化 | 第34页 |
·连接和转化 | 第34-35页 |
·连接 | 第34页 |
·感受态细胞制备 | 第34-35页 |
·转化 | 第35页 |
·重组克隆的筛选与鉴定 | 第35-36页 |
·质粒的提取 | 第35-36页 |
·重组质粒DNA的酶切检测 | 第36页 |
·DNA测序 | 第36页 |
·序列分析 | 第36页 |
·Northern杂交 | 第36-38页 |
·RNA甲醛变性琼脂糖凝胶电泳 | 第36页 |
·转膜 | 第36-37页 |
·同位素探针制备 | 第37页 |
·杂交 | 第37-38页 |
2 结果与分析 | 第38-45页 |
·黄瓜亚精胺合成酶基因部分cDNA序列的分离 | 第38页 |
·CsSPDS基因3’末端cDNA序列的克隆 | 第38-39页 |
·CsSPDS基因5’末端cDNA序列的克隆 | 第39页 |
·全长拼接和序列分析 | 第39-43页 |
·序列比对 | 第43-44页 |
·不同器官CsSPDS表达分析 | 第44页 |
·性逆转过程中CsSPDS的表达分析 | 第44-45页 |
3 讨论 | 第45-49页 |
第五章 讨论 | 第49-52页 |
1 黄瓜单性花性别决定和器官发生原理 | 第49-50页 |
2 黄瓜单性花相反性器官的发育 | 第50页 |
3 激素与多胺的互作及其与黄瓜性别分化 | 第50-52页 |
参考文献 | 第52-59页 |
Abstract | 第59-61页 |
硕士期间发表论文 | 第61-62页 |
致谢 | 第62页 |