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BMP-2、VEGF基因修饰组织工程骨的实验研究

提要第1-10页
第1章 前言第10-11页
第2章 文献综述第11-40页
   ·组织工程学的研究进展第11页
   ·支架材料第11-16页
   ·种子细胞第16-20页
   ·细胞因子第20-24页
   ·组织工程骨的血管化第24-28页
   ·骨组织工程的发展前景及所面对的问题第28-29页
 参考文献第29-40页
第3章 实验部分第40-104页
 第1节 大鼠骨髓间充质干细胞分离培养及体外分化的研究第40-54页
  前言第40页
  1 材料和方法第40-44页
   ·实验材料第40-42页
   ·实验方法第42-44页
  2 实验结果第44-48页
   ·BMSCs 分离、纯化及形态学特征第44-45页
   ·BMSCs 的细胞周期特征第45页
   ·BMSCs 的生长曲线第45-47页
   ·表面标志CD34、CD44 的表达第47页
   ·碱性磷酸酶活性测定第47页
   ·向脂肪细胞诱导分化第47-48页
  3 讨论第48-52页
  参考文献第52-54页
 第2节 BMP-2、VEGF 及其双基因质粒的构建及鉴定第54-74页
  前言第54页
  1 材料和方法第54-60页
   ·材料第54-56页
   ·方法第56-60页
  2 结果第60-69页
   ·RT-PCR 分别扩增VEGF、BMP2第60-61页
   ·PCR 产物TA 克隆第61-66页
   ·VEGF 克隆入真核表达载体pEGFP-N1第66-67页
   ·BMP2 分别克隆入真核表达载体pEGFP-N1、pEGFP-N1/ VEGF第67-69页
  3 讨论第69-73页
  参考文献第73-74页
 第3节 重组质粒转染大鼠骨髓间充质干细胞及其表达的检测第74-93页
  前言第74页
  1 材料和方法第74-75页
   ·材料第74-75页
  2 实验方法第75-78页
   ·质粒的制备第75页
   ·BMSCs 的培养第75页
   ·细胞的转染第75-76页
   ·大鼠BMSCs 质粒转染后的观察第76页
   ·MTT 法测定转染对细胞增殖情况的影响第76页
   ·ELISA 方法检测第76-77页
   ·RT-PCR 检测转染细胞的BMP-2、VEGF m RNA 表达水平第77页
   ·免疫组织化学染色分析BMP-2、VEGF 表达情况第77-78页
   ·I 型胶原、骨钙素、ALP 免疫组织化学染色第78页
  3 结果第78-87页
   ·转染细胞镜下观察第78-79页
   ·荧光显微镜下观察第79-80页
   ·转染细胞的MTT 实验第80-81页
   ·ELISA 方法检测BMP-2、VEGF第81-82页
   ·RT-PCR 结果第82-83页
   ·BMP-2 免疫组化染色结果第83-84页
   ·VEGF 免疫组织化学染色结果第84-85页
   ·ALP 免疫组化染色结果第85页
   ·I 型胶原免疫组化染色结果第85-86页
   ·骨钙素免疫组化染色结果第86-87页
  4 讨论第87-91页
  参考文献第91-93页
 第4节 体外构建组织工程骨第93-104页
  前言第93页
  1 材料第93页
   ·细胞和支架准备第93页
   ·主要试剂、仪器设备第93页
  2 方法第93-94页
   ·细胞准备第93-94页
  3 支架材料的准备第94-95页
   ·nano-HA/PLGA 的预湿第94页
   ·nano-HA/PLGA 支架材料上接种细胞第94-95页
  4 结果第95-98页
   ·黏附细胞计数第95页
   ·细胞形态学观察第95-96页
   ·扫描电镜观察支架材料上粘附细胞的情况第96-98页
  5 讨论第98-102页
  参考文献第102-104页
第4章 结论第104页
创新点第104-105页
攻读博士学位期间发表的论文第105-106页
致谢第106-107页
中文摘要第107-110页
ABSTRACT第110-112页

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