| 摘要 | 第5-7页 |
| ABSTRACT | 第7-8页 |
| 第1章 绪论 | 第13-40页 |
| 1.1 研究背景 | 第13-16页 |
| 1.1.1 油桐相关研究 | 第15-16页 |
| 1.2 花发育过程 | 第16-29页 |
| 1.2.1 开花决定 | 第17-22页 |
| 1.2.1.1 光周期途径 | 第17-18页 |
| 1.2.1.2 春化途径 | 第18-19页 |
| 1.2.1.3 自主途径 | 第19页 |
| 1.2.1.4 赤霉素途径 | 第19-21页 |
| 1.2.1.5 开花调控途径的整合 | 第21-22页 |
| 1.2.2 花序分生组织和花分生组织的建立 | 第22-24页 |
| 1.2.3 花器官的发育 | 第24-27页 |
| 1.2.4 花分生组织活性维持和终止 | 第27-29页 |
| 1.3 植物性别分化 | 第29-38页 |
| 1.3.1 开花植物的性别表现 | 第29-31页 |
| 1.3.2 单性花形成的发育阶段和过程 | 第31页 |
| 1.3.3 雌雄同株异花模式植物-玉米的性别决定机制 | 第31-38页 |
| 1.3.3.1 玉米花的结构 | 第32-33页 |
| 1.3.3.2 玉米单性花的形成过程 | 第33-35页 |
| 1.3.3.3 玉米性别分化突变体 | 第35页 |
| 1.3.3.4 玉米雄蕊败育的途径 | 第35-36页 |
| 1.3.3.5 玉米雌蕊败育的途径 | 第36-38页 |
| 1.4 主要研究内容及技术路线 | 第38-40页 |
| 第2章 油桐花发育形态学研究 | 第40-58页 |
| 2.1 实验材料 | 第40-41页 |
| 2.1.1 材料 | 第40页 |
| 2.1.2 试剂 | 第40-41页 |
| 2.1.3 实验仪器 | 第41页 |
| 2.2 方法 | 第41-44页 |
| 2.2.1 油桐花芽石蜡制片方法 | 第41-42页 |
| 2.2.2 油桐花芽石蜡切片染色 | 第42页 |
| 2.2.3 扫面电镜制片的程序 | 第42页 |
| 2.2.4 DAPI染色 | 第42-43页 |
| 2.2.5 细胞凋亡的TUNEL检测 | 第43-44页 |
| 2.2.6 花器官长度的测量 | 第44页 |
| 2.3 实验结果与分析 | 第44-56页 |
| 2.3.1 油桐花芽的物候期观察 | 第44-47页 |
| 2.3.2 油桐花器官发育过程 | 第47-52页 |
| 2.3.3 雌雄花雄蕊发育的形态学观察 | 第52-55页 |
| 2.3.4 雌花雄蕊发育的细胞学观察 | 第55-56页 |
| 2.4 本章小结 | 第56-58页 |
| 第3章 油桐雌雄花转录组学分析 | 第58-84页 |
| 3.1 实验材料 | 第58-59页 |
| 3.1.1 材料 | 第58页 |
| 3.1.2 试剂 | 第58页 |
| 3.1.3 实验仪器 | 第58-59页 |
| 3.2 试验方法 | 第59-67页 |
| 3.2.1 油桐花芽RNA的提取与纯化 | 第59-61页 |
| 3.2.2 cDNA文库的构建及测序 | 第61-63页 |
| 3.2.3 数据预处理和序列拼接 | 第63页 |
| 3.2.4 数据库注释 | 第63页 |
| 3.2.5 基因功能分类 | 第63-64页 |
| 3.2.6 差异表达基因 | 第64页 |
| 3.2.7 差异基因显著性富集分析 | 第64-65页 |
| 3.2.8 差异表达基因qRT-PCR验证 | 第65-67页 |
| 3.3 实验结果与分析 | 第67-83页 |
| 3.3.1 油桐雌、雄花总RNA质量检测 | 第67-68页 |
| 3.3.2 文库构建质检结果 | 第68-69页 |
| 3.3.3 测序质控结果 | 第69-70页 |
| 3.3.4 转录组原始数据的统计分析 | 第70-71页 |
| 3.3.5 Unigene功能注释 | 第71-72页 |
| 3.3.6 Unigene功能分类 | 第72-74页 |
| 3.3.6.1 Unigene G0分类 | 第72-73页 |
| 3.3.6.2 Unigenes KEGG分类 | 第73-74页 |
| 3.3.7 Unigene差异表达分析 | 第74-78页 |
| 3.3.7.1 差异表达基因(DEGs)的结果 | 第74-75页 |
| 3.3.7.2 差异表达基因的G0富集分析 | 第75-78页 |
| 3.3.8 油桐雌、雄花特异性差异表达激素相关的基因分析 | 第78页 |
| 3.3.9 油桐雌、雄花特异性差异表达转录因子相关的基因分析 | 第78-80页 |
| 3.3.10 油桐雌花花分生组织相关的差异基因 | 第80-83页 |
| 3.4 本章小结 | 第83-84页 |
| 第4章 油桐雌雄花蛋白质组学差异分析 | 第84-103页 |
| 4.1 实验材料 | 第84-85页 |
| 4.1.1 材料 | 第84页 |
| 4.1.2 试剂 | 第84-85页 |
| 4.1.3 实验仪器 | 第85页 |
| 4.2 实验方法 | 第85-93页 |
| 4.2.1 油桐花芽蛋白质的提取 | 第85-86页 |
| 4.2.2 蛋白质的定量 | 第86-87页 |
| 4.2.3 第一向等电聚焦电泳(IEF) | 第87-88页 |
| 4.2.4 胶条平衡 | 第88-89页 |
| 4.2.5 灌SDS-PAGE凝胶 | 第89页 |
| 4.2.6 第二向SDS-PAGE电泳 | 第89-90页 |
| 4.2.7 2-D胶蛋白质点的检测 | 第90页 |
| 4.2.8 凝胶扫描 | 第90-91页 |
| 4.2.9 凝胶电泳图谱分析 | 第91页 |
| 4.2.10 蛋白质谱检测 | 第91-92页 |
| 4.2.11 荧光定量PCR | 第92-93页 |
| 4.3 实验结果 | 第93-102页 |
| 4.3.1 二维电泳图谱分析 | 第93-94页 |
| 4.3.2 差异蛋白的分析 | 第94-95页 |
| 4.3.3 差异蛋白鉴定 | 第95-97页 |
| 4.3.4 雄花特异表达蛋白 | 第97-101页 |
| 4.3.5 雌花特异表达蛋白 | 第101-102页 |
| 4.4 本章小结 | 第102-103页 |
| 参考文献 | 第103-116页 |
| 附录 | 第116-159页 |
| 附录1 TUNEL检测溶液的配置 | 第116-117页 |
| 附录2 油桐雌、雄花差异表达基因 | 第117-138页 |
| 附录3 雌花差异基因G0富集分析 | 第138-145页 |
| 附录4 雄花差异基因G0富集分析 | 第145-155页 |
| 附录5 蛋白质提取溶液配制 | 第155页 |
| 附录6 二维电泳溶液配制 | 第155-159页 |
| 致谢 | 第159-161页 |
| 在读期间发表的学术论文与取得的其他研究成果 | 第161-162页 |
