| 摘要 | 第1-8页 |
| ABSTRACT | 第8-15页 |
| 英文缩写一览表 | 第15-17页 |
| 前言 | 第17-20页 |
| 第一章 BDNF对高糖状态下原代培养的视网膜神经元的保护作用 | 第20-59页 |
| 第一节 原代培养的Wistar大鼠视网膜神经元高糖模型的建立 | 第20-34页 |
| ·材料和方法 | 第20-25页 |
| ·实验试剂 | 第20-21页 |
| ·主要仪器设备 | 第21页 |
| ·实验方法 | 第21-25页 |
| ·统计学分析 | 第25页 |
| ·结果 | 第25-30页 |
| ·大鼠视网膜神经元原代培养观察及神经元鉴定 | 第25-26页 |
| ·不同浓度葡萄糖对视网膜神经元存活率的影响 | 第26-27页 |
| ·不同浓度葡萄糖对视网膜神经元凋亡率的影响 | 第27-30页 |
| ·讨论 | 第30-33页 |
| ·小结 | 第33-34页 |
| 第二节 BDNF对高糖诱导的视网膜神经细胞改变的保护效应 | 第34-43页 |
| ·材料与方法 | 第34-36页 |
| ·实验试剂 | 第34页 |
| ·主要仪器设备 | 第34页 |
| ·实验方法 | 第34-36页 |
| ·统计学分析 | 第36页 |
| ·结果 | 第36-40页 |
| ·MTT法检测视网膜神经元存活率的结果 | 第36-37页 |
| ·流式细胞仪检测视网膜神经元凋亡率的结果 | 第37-39页 |
| ·BDNF对视网膜神经元TrkB蛋白表达的影响 | 第39-40页 |
| ·讨论 | 第40-42页 |
| ·小结 | 第42-43页 |
| 第三节 BDNF对高糖状态下视网膜神经元ERKMAPK通路的影响 | 第43-59页 |
| ·材料和方法 | 第43-49页 |
| ·实验试剂 | 第43-44页 |
| ·主要仪器设备 | 第44-45页 |
| ·实验方法 | 第45-49页 |
| ·统计学分析 | 第49-50页 |
| ·结果 | 第50-55页 |
| ·BDNF对视网膜神经元TrkB、ERK蛋白表达的影响 | 第50-51页 |
| ·BDNF对视网膜神经元TrkB、ERK磷酸化的影响 | 第51-53页 |
| ·BDNF对视网膜神经元TrkB及ERK转录水平的影响 | 第53-55页 |
| ·BDNF对视网膜神经元凋亡率的影响 | 第55页 |
| ·讨论 | 第55-58页 |
| ·小结 | 第58-59页 |
| 第二章 BDNF及其受体在糖尿病大鼠视网膜上的表达 | 第59-81页 |
| 第一节 糖尿病大鼠模型的建立 | 第59-69页 |
| ·材料和方法 | 第59-61页 |
| ·实验试剂 | 第59页 |
| ·主要仪器设备 | 第59页 |
| ·实验方法 | 第59-61页 |
| ·数据统计学分析 | 第61页 |
| ·结果 | 第61-67页 |
| ·糖尿病动物模型的建立 | 第61-63页 |
| ·糖尿病大鼠视网膜组织HE染色观察结果 | 第63-65页 |
| ·糖尿病大鼠视网膜组织透射电镜观察结果 | 第65-67页 |
| ·讨论 | 第67-68页 |
| ·小结 | 第68-69页 |
| 第二节 BDNF及其受体在糖尿病大鼠模型视网膜中的表达 | 第69-81页 |
| ·材料和方法 | 第69-73页 |
| ·实验试剂 | 第69-70页 |
| ·主要仪器设备 | 第70页 |
| ·实验方法 | 第70-73页 |
| ·数据统计学分析 | 第73页 |
| ·结果 | 第73-78页 |
| ·糖尿病大鼠视网膜GFAP免疫组织荧光化学染色结果 | 第73-74页 |
| ·糖尿病大鼠视网膜TrkB、ERK免疫组织化学染色结果 | 第74-76页 |
| ·糖尿病大鼠视网膜组织BDNF蛋白的表达 | 第76页 |
| ·糖尿病大鼠视网膜组织BDNF、TrkB、ERK mRNA的表达 | 第76-78页 |
| ·讨论 | 第78-80页 |
| ·小结 | 第80-81页 |
| 结论 | 第81-82页 |
| 参考文献 | 第82-91页 |
| 综述 | 第91-101页 |
| 参考文献 | 第96-101页 |
| 致谢 | 第101-102页 |
| 攻读博士学位期间发表的文章 | 第102页 |
